Болезнь вызывают трематоды Alaria alata семейства Diplostomatidae подотряда Strigeata. Половозрелые паразитические черви локализуются в тонких кишках собак, котов, волков, лисиц, песцов.
Возбудитель. A. alata — гельминты мелких размеров, длиной 2,4 — 4,4 мм, шириной 1,2 — 2,1 мм. Передняя часть тела плоская, задняя — цилиндрическая. Характерным признаком паразита является наличие заметных ушковидных образований возле ротового присоска. Половые органы занимают заднюю часть тела гельминта.
Яйца овальной формы, больших размеров (0,1 …0,13 х 0,063…0,099 мм), незрелые.
Метацеркарии достигают в длину 0,4 — 0,5 мм, в ширину — 0,2 мм.
Цикл развития. Возбудитель развивается с изменением трех групп хозяев: дефинитивных, промежуточных (пресноводные моллюски рода Planorbis) и дополнительных (лягушки, головастики). Кроме того, значительную роль играют резервуарные хозяева (грызуны).
Дефинитивные хозяева выделяют яйца алярий с фекалиями. В воде при температуре 21 — 27 °С за 11 — 12 суток яйца созревают и из них выходят мирацидии. Во время встречи с моллюсками (Р. planorbis, P. vortex) они проникают в их ножки, мигрируют в печень, где последовательно проходят стадии спороцист, редий и церкариев. При температуре 22 — 24 °С церкарии с раздвоенным хвостовым концом оставляют организм промежуточного хозяина через 37 — 45 суток. Во время встречи с головастиками или лягушками церкарии проникают в их тело, где формируются метацеркарии.
Плотоядные животные заражаются при поедании дополнительных хозяев. Нередко лягушек и головастиков заглатывают резервуарные хозяева (соболь, ласка, норка, хорек, куница). В этом случае заражение может произойти при поедании мяса и внутренних органов грызунов, в организме которых паразитируют метацеркарии. В кишках плотоядных животных гельминты достигают половой зрелости через 32 — 45 суток.
Эпизоотологические данные. Аляриоз — довольно распространенная инвазия. Значительному распространению болезни способствует высокая устойчивость яиц возбудителя к факторам окружающей среды, а также продолжительность жизни метацсркариев в теле резервуарных хозяев. Зарегистрированы случаи заражения людей.
Патогенез и иммунитет. Половозрелые паразиты прикрепляются с помощью присосок к слизистой оболочке тонких кишок. При этом они оказывают значительное механическое действие, вызывают атрофические и дистрофические процессы, вследствие чего нарушается секреторно-моторная функция кишок.
В организме резервуарных хозяев метацеркарии локализуются в виде цист в жировой ткани брюшной и грудной полостей, в мышцах, реже на сердце, стенке аорты, в почках, зобной железе, под плеврой и в лимфатических узлах. Они приводят к морфофункциональным изменениям в соответствующих органах и тканях.
Иммунитет не изучен.
Симптомы болезни. В зависимости от локализации возбудителей различают две формы заболевания: кишечный аляриоз, вызываемый половозрелыми гельминтами, и метацеркарный.
Клинически регистрируется преимущественно кишечная форма. В случае высокой интенсивности инвазии у собак наблюдаются нарушения пищеварения: снижение аппетита, понос, плохое переваривание кормов. Лисята часто гибнут.
Патологоанатомические изменения. Слизистая оболочка тонких кишок воспалена. На ней можно обнаружить значительное количество паразитических червей.
Диагностика. Прижизненный диагноз устанавливают на основании исследования фекалий флотационным методом с использованием насыщенного раствора натрия гипосульфита (метод Щербовича) или магния сульфата (920 г на 1 л воды) и выявления в них яиц трематод.
Наиболее достоверна посмертная диагностика. При вскрытии трупов выявляют возбудителей инвазии и характерные изменения в местах их локализации. У резервуарных хозяев в разных органах и тканях находят цисты, которые содержат метацеркарии.
Лечение. Для дегельминтизации применяют ареколина бромид (бромистоводородный ареколин): собакам в дозе 2 мг/кг, лисицам — 10 мг/кг. Его вводят перорально с молоком после 16 — 18-часовой голодной диеты. Эффективны также препараты, которые содержат празиквантел (25 мг/кг в течение 3 дней), а также фенбендазол (25 мг/кг в течение 2 недель).
Профилактика и меры борьбы. С целью профилактики инвазии собакам и лисицам запрещается скармливать резервуарных хозяев. В теплое время года следует предотвращать контакты плотоядных животных с дополнительными хозяевами паразита.
Фекалии больных животных обеззараживают сжиганием, биотермическим методом или обработкой хлорной известью. На неблагополучной территории за 3 — 4 недели до гона осуществляют плановую дегельминтизацию.
Если вы нашли ошибку, пожалуйста, выделите фрагмент текста и нажмите Ctrl+Enter.
www.activestudy.info
Аляриоз - трематодоз собак, волков, лисиц, песцов, уссурийских енотов и других пушных зверей, вызываемый гельминтами сем. Alariidae, подотряда Strigeata.
Локализация. Половозрелые алярии паразитируют в основном в переднем отделе тонкого кишечника у собак и других плотоядных из семейства собачьих, личинки - метацеркарии - в мышцах и во внутренних органах амфибий и млекопитающих (норок, куниц, соболей, хорьков, ласок и грызунов).
Распространение и вредность. Аляриоз встречается почти повсеместно в нашей стране и во всех странах Западной Европы. Паразитирование взрослых гельминтов в переднем отделе тонкой кишки, где происходит основной процесс секреции, переваривания и всасывания пищи, говорит о том, что этот паразит далеко не безвреден для организма больных животных. Кроме того, личинки гельминта поселяются в разных органах и мышцах резервуарных хозяев из сем. куньих, что обусловливает в местах их локализации морфо-функциональные изменения.
Возбудитель. Трематода Alaria alata в половозрелой стадии достигает длины 2,4-4,4 мм, ширины 1,2-2,1 мм. Передняя часть тела плоская, задняя - цилиндрическая. Весьма характерный признак трематоды - наличие заметных ушковидных образований вокруг ротовой присоски. Половые органы занимают заднюю часть гельминта. Метацеркарии из органов и тканей животных достигают 0,4—0,5 мм в длину и 0,2 мм в ширину. Яйца правильной овальной формы, золотистого цвета, их длина равна 0,107-0,131 мм, ширина 0,063- 0,093 мм (рис. 3).
Биология развития. Развитие трематоды происходит с участием трех видов хозяев: дефинитивных (собак и др. плотоядных), промежуточных (пресноводных моллюсков рода Planorbis) и дополнительных (лягушек, головастиков). Кроме того, в жизненном цикле алярий значительную роль играют резервуарные хозяева (грызуны и плотоядные из сем. куньих).
В тонком кишечнике собак половозрелые гельминты откладывают яйца, которые с фекалиями выбрасываются наружу. Во внешней среде при температуре воды 21-27° С в яйце за 11-12 суток формируются мирацидий. Мирацидии активно внедряются в ножку пресноводных моллюсков Planorbis planorbis - промежуточных хозяев, где происходит партеногенетическое развитие трематоды с образованием большого количества церкариев. Этот процесс завершается при 22-24° С за 37-45 суток, при температуре 18-19° С - за 70-80 суток. В дальнейшем церкарии покидают организм моллюска и в воде при встрече с дополнительными хозяевами - головастиками и лягушками - внедряются в их тело, где формируются метацеркарии. У головастиков они локализуются в полости тела и хвосте, у лягушек - в мышцах языка, подчелюстных мышцах, реже - в мускулатуре конечностей. Лягушек и головастиков могут поедать резервуарные хозяева (норки, куницы, соболя, хорьки, ласки). Дефинитивные хозяева заражаются при поедании дополнительных и резервуарных хозяев. В кишечнике дефинитивных хозяев алярии достигают половозрелой стадии за 32-45 сут.
Эпизоотологические данные. Аляриоз плотоядных животных - довольно широко распространенное заболевание в нашей стране. Широкому распространению инвазии способствует большой круг дефинитивных и резервуарных хозяев. Эта инвазия чаще встречается у бродячих собак, что связано с их образом питания. Большую возможность заражения также имеют охотничьи собаки, которым часто скармливают тушки диких зверей - резервуарных хозяев. Немаловажную роль в распространении аляриоза играют яйца гельминта, которые обладают довольно высокой устойчивостью к условиям внешней среды. Продолжительность жизни метацеркариев в теле промежуточных и резервуарных хозяев исчисляется многими месяцами.
Патогенез и симптомы болезни. В зависимости от стадии паразитирования трематоды различают кишечный и мышечный аляриоз. При кишечном аляриозе половозрелые гельминты локализуются в переднем отделе тонкой кишки, где, прикрепляясь к слизистой, оказывают механическое воздействие. В результате нарушается секреторно-моторная функция кишечника, отмечаются поносы, плохая переваримость кормов. Животные худеют, отстают в росте и развитии, лисята часто погибают.
Мышечный аляриоз главным образом наблюдается у соболей, норок и других животных из семейства куньих. Так как метацеркарии у них локализованы в самых разных органах (сердце, аорта, легкие и др.), то, безусловно, они кроме механического повреждения структуры органов оказывают сильное аллергическое воздействие.
Диагностика. При кишечном аляриозе собак и других животных диагноз ставят путем исследования фекалий методом флотации. Для этого используют насыщенные растворы солей гипосульфита натрия (1750 г на 1 л воды) и сернокислой магнезии (920 г на 1 л воды). При посмертном гельминтологическом вскрытии 12-перстной и начала тощей кишки обнаруживают трематод. Для выявления метацеркариев в мышцах и различных органах промежуточных и резервуарных хозяев следует исследовать небольшие кусочки мышц из мест локализации личинок в компрессориуме с дальнейшим изучением под большим (МБС-1, Х24) и малым увеличением микроскопа (Х40, Х56).
Лечение и профилактические меры борьбы. При аляриозе применяют политрем, празиквантел (см. опистрохоз). Собакам не следует скармливать тушки резервуарных хозяев. В теплое время года собак нужно содержать в условиях, предотвращающих контакты с промежуточными и резервуарными хозяевами паразита. Фекалии больных животных необходимо обезвреживать путем сжигания хлорной известью или подвергать биотермической обработке.
studfiles.net
Актуальность темы. Среди паразитарных болезней плотоядных животных особое место занимает аляриоз, вызываемый трематодой Alaria alata (Goeze, 1782), половозрелые стадии которой паразитируют в тонком отделе кишечника, на территории Российской Федерации аляриоз зарегистрирован повсеместно, трематоды изолированы из кишечника лисиц, песцов, волков, шакалов, собак, енотовидных собак (Л.Ф. Потехина, 1950, 1951, 1971- В. А. Савинов, 1952, 1953- Ю. Ф. Петров и др., 2005- А. Н: Шинкаренко, 2005-Б.Г. Абалихш^и др., 2002- E.H. Крючкова и др., 2008 и др.).
Биологию трематод Alaria alata, которые встречаются на территории Российской Федерации, в организме промежуточных хозяев — пресноводных моллюсков из рода Planorbis изучали N.S. Rosma (1931*, 1934), S. Vamaguti (1939, 1958), Л. Ф. Потехина (1950, 1951), в организме головастиков и взрослых амфибий из отряда Anura — S. Vamaguti (1939, 1958), Л. Ф. Потехина (1950,' 1951), а в организме плотоядных — Л. Ф. Потехина (1950- 1951), В. А. Савинов (1952, 1953), А. Н. Шинкаренко (2005). Однако полученные данные по биологии Alaria alata в организме амфибий из отряда Anura и в организме плотоядных авторы& lt- трактуют по-разному. Все это определяет необходимость еще раз подробно остановиться на изучении биологии- паразита в организме плотоядных.
Несмотря на достаточно широкое распространение аляриоза среди домашних и диких плотоядных, до сих пор остается неясным патогенез и клиника заболевания, хотя в литературе имеется несколько сообщений о метацеркариозной бронхопневмонии плотоядных при паразитировании Alaria alata (В.А. Савинов, 1952,1953- К. И. Скрябин, 1971).
Отечественной ветеринарной наукой предложено много достаточно высокоэффективных антгельминтиков при трематодозах млекопитающих (Н.В. Демидов, 1982- Т. П. Веселова, 1968- Т. П. Веселова и др., 1994- И. А. Архипов, 2009- Ю. Ф. Петров, 1988, 1994- Ю. Ф. Петров и др., 2006- В. В. Кузьмичев, 1997- Б. Г. Абалихин, 1996- А. Н. Шинкаренко, 2005 и др.). Однако практические ветеринарные специалисты пока не располагают высокоэффективными антгельминтиками для дегельминтизации плотоядных i при аляриозе.
Цель и задачи исследований. Целью наших исследований была разработка рациональной системы борьбы с аляриозом домашних и диких плотоядных на территории центрального района Нечерноземной зоны Российской Федерации. Для чего были поставлены следующие задачи:
-изучить распространение аляриоза среди домашних и диких плотоядных в центральном районе Нечерноземной зоны Российской Федерации-
-определить состав промежуточных, резервуарных хозяев Alaria alata в данном регионе-
-уточнить некоторые детали развития Alaria alata в организме плотоядных-
-изучить патогенез и клинику аляриоза у собак. -
-изыскать высокоэффективные антгельминтики для дегельминтизации плотоядных при аляриозе-
-разработать систему профилактики аляриоза для Европейской части Российской Федерации.
Научная новизна. Установлено, что на территории Московской и Тверской областей трематоды Alaria alata паразитируют в тонком отделе кишечника квартирных, служебных, прифермских, бродячих собак, лисиц, волков. В возрастном аспекте наивысшая инвазия наблюдается у плотоядных 4-летнего и старше возраста, умеренная — у животных 1,5−3-летнего возраста, наименьшая — у плотоядных 1−6-месячного возраста.
Промежуточными хозяевами для Alaria alata в центральном районе Нечерноземной зоны Российской Федерации являются пресноводные моллюски Planorbis planorbis, Planorbis vortex, резервуарными хозяевами -головастики и взрослые амфибии из отряда Anura, в организме которых формируются мезоцеркарии без образования цист. В передаче инвазионного i начала от амфибий к плотоядным важную роль играют насекомоядные млекопитающие (кроты, ежи) и мышевидные грызуны (лесные полевки, обыкновенные полевки, лесные мыши), в мышечной ткани и подкожной клетчатке которых мезоцеркарии A. alata сохраняются длительное время.
Установлено, что мезоцеркарии A. alata в организме плотоядных из желудка мигрируют в грудную, затем в брюшную полость, после чего на 4 сутки достигают альвеолярной ткани легких, где за 14 дней они превращаются в метацеркариев. Последние на 18−20 сутки инвазии мигрируют в бронхи и трахею, отхаркиваются в ротовую полость, заглатываются и на 30−35 сутки инвазии достигают половой зрелости. Некоторая часть мезоцеркариев мигрирует из желудка в легкие гематогенным путем через печень.
Выявлено, что аляриоз протекает в двух формах — острая и хроническая. Острая форма во времени совпадает с паразитированием личинок A. alata в легких плотоядных и сопровождается? метацеркариозной бронхопневмонией. Хроническая форма? во времени- совпадает с паразитированием половозрелых A. alata в кишечнике плотоядных, сопровождается развитием- язвенного энтерита, дисбактериозом кишечника: и глубокими нарушениями функций органов и систем-
Для дегельминтизации плотоядных при аляриозе предложены фенбендазол и ивомек плюс.
Практическая ценность. Предложены- для дегельминтизации: плотоядных при аляриозе фенбендазол (по 30−40 мг/кг по ДВ внутрь два-три дня подряд) и ивомек плюс (подкожно-, однократно по 0,150 мл на голову). Научные разработки автора вошли в нормативный документ: & laquo-Рекомендации ¦ по профилактике аляриоза. плотоядных в Российской Федерации& raquo- (утверждены Россельхозакадемией 29 сентября 2005 года).
Апробация работы- Основные положения диссертации доложены- ш одобрены на: научных конференциях ВОГ РАН & laquo-Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями& raquo- (М., 2007, 2008, 2009) — научной конференции Костромской TGXA (2009) — научной конференции Ивановской ГСХА (2009) — научной конференции ГНУ Самарская НИВС (2009).
На защиту выносятся:
-распространение аляриоза среди домашних и диких плотоядных в Московской и Тверской областях-
-состав промежуточных и резерву арных хозяев Alaria alata в изучаемом регионе-
-биология A. alata в организме собак- -патогенез и клиника аляриоза у собак- -эффективность антгельминтиков при аляриозе плотоядных- -система профилактики^ аляриоза в Европейской части Российской Федерации.
Публикации. По материалам диссертации опубликованы 9 работ, в том числе четыре работы в изданиях, регламентированных ВАК РФ для докторских и кандидатских диссертаций, которые отражают основное содержание диссертации.
Личный вклад соискателя. Представленная диссертация является результатом шестилетних научных исследований автора. По материалам первых двух разделов диссертации нами в соавторстве с Петровым Ю. Ф., Гудковой А. Ю., Зубовым A.B., Рогозиной И. Е., Шахбиевым Х. Х., Коренсковой Е. В. в журнале & laquo-Российский паразитологический журнал& raquo-, в материалах научной конференции ВОГ РАН опубликованы три работы. I
Однако в нашу диссертацию не вошли материалы исследований вышеперечисленных соавторов работ (в диссертационный совет представлены справки от соавторов об отсутствии заимствования нами их данных). По материалам третьего раздела диссертации нами в соавторстве с Петровым Ю. Ф., Гудковой А. Ю., Рогозиной И. Е., Буслаевым C.B. в журналах & laquo-Ветеринарная патология& raquo-, & laquo-Российский паразитологический журнал& raquo- опубликованы две работы. Однако исследования соавторов статей в нашу диссертацию не вошли (в диссертационный совет представлены справки от соавторов об отсутствии заимствования их данных).
Объем и структура диссертации. Диссертация изложена на 119 страницах компьютерного текста, содержит 16 таблиц, 33 рисунка. Состоит из введения, обзора литературы, материалов и методов исследований, четырех глав собственных исследований, заключения, выводов, практических предложений. Список литературы включает 115 источников, в том числе 87 отечественных и 28 иностранных авторов.
ВЫВОДЫ:
1.В центральном районе (г. Москва и Московская область, г. Тверь и
Тверская область) Нечерноземной зоны Российской Федерации половозрелые трематоды Alaria alata паразитируют в тонком отделе кишечника квартирных, служебных, прифермских и бродячих собак, волков и лисиц.
1.1. Квартирные собаки в гг. Москве и Твери, ни разу не выезжавшие вместе с хозяевами за пределы города, на дачу, практически свободны от A. alata, тогда как квартирные собаки, выезжавшие вместе с хозяевами в летний период (июнь-август) на дачу, инвазированы аляриями на 12,5−25% при средней ИИ=3,8+0,18−9,8+0,38 экз. на голову.
1.2. Служебные собаки в г. Москве инвазированы аляриями на 0,25%, а служебные собаки, побывавшие в Чеченской Республике, заражены на 15%.
1.3. Прифермские собаки в Московской и Тверской областях инвазированы аляриями на 40,0−85,3% при средней ИИ=8,4+0,48−10,2+0,48 экз. на голову.
1.4.В г. Москве и Подмосковье, в г. Твери и Тверской области бродячие собаки заражены аляриями на 46,1−59,3% при средней ИИ=14,8+1,21−18,5& plusmn-0,96 экз. на голову.
1.5.В Тверской и Московской областях волки заражены аляриями на 80−100% при средней ИИ=24,5+0,78−26,8+0,89 экз., лисицы — соответственно на 85,7−87,5% и 32,4+1,27−36,8+2,12 экз. на голову. Норки, барсуки и куницы свободны от алярий.
2. Наивысшая Э И (72,1%) и ИИ (28,4+1,84 экз.) аляриями наблюдаются у собак старше 4-летнего возраста, умеренная (50% и 14,8+1,12 экз.) — у плотоядных 1,5−3-летнего возраста, наименьшая (8,2% и 3,8+0,32 экз.) — у животных 1−6-месячного возраста.
3.В центральном районе Нечерноземной зоны Российской Федерации промежуточными хозяевами Alaria alata являются пресноводные моллюски Planorbis planorbis (ЭИ=2,7−5,4%) и Planorbis vortex (1,1−1,6%). Наивысшая инвазия моллюсков личинками A. alata наблюдается с середины апреля до середины июня, в летний период инвазированность их падает, но к осени ЭИ несколько увеличивается.
4. Головастики амфибий из отряда Anura инвазированы мезоцеркариями Alaria alata на 1,9−4,1% при средней ИИ=4,6+0,28−6,4+0,24 экз. на голову, а взрослые амфибии (прудовая, озерная, травяная, остромордая лягушки, серая жаба) заражены на 9−11,1% при средней ИИ=7,2+0,28−7,8+0,31 экз. на голову. Мезоцеркарии алярий локализуются в мышечной ткани языка, конечностей, туловища головастиков и взрослых амфибий- окружены они тонкой прозрачной капсулой, но у них отсутствуют цисты, ушковидные придатки, орган Брандеса, половая система.
5. Насекомоядные млекопитающие — ежи инвазированы мезоцеркариями A. alata на, 22,2−50% при средней ИИ=9,7+0,31−9,8+0,18 экз. на голову, кроты — соответственно на 20−50% и 7,9+0,38−8,2+0,44 экз. на голову. Мезоцеркарии алярий располагаются в мышечной ткани конечностей, туловища, груди, языка, сердца, в подкожной клетчатке кротов и ежей. Мезоцеркарии окружены тонкой, прозрачной капсулой, у них отсутствуют цисты, орган Брандеса, ушковидные придатки, половые органы.
6. Мезоцеркарии Alaria alata встречаются в мышечной ткани конечностей, груди, шеи, туловища, языка мышевидных грызунов (лесные полевки, обыкновенные полевки, лесные мыши). ЭИ грызунов составляет
7,8−9,9%, при средней ИИ=3,9+0,18−4,4& plusmn-0,23 экз. на голову. Мезоцеркарии окружены тонкой, прозрачной капсулой, у них отсутствуют цисты, орган Брандеса, ушковидные придатки, половые органы.
7.В естественных биотопах заражение плотоядных с Alaria alata происходит при поедании инвазированных мезоцеркариями взрослых амфибий, насекомоядных млекопитающих (ежей и кротов) и мышевидных грызунов, которые являются резервуарными хозяевами для трематод. Среди резервуарных хозяев главную роль в передаче инвазионного начала к плотоядным играют головастики и взрослые амфибии из отряда Anura, которые обеспечивают выход личинок Alaria alata из водоема, что делает их доступными для плотоядных.
8.В организме плотоядных мезоцеркарии Alaria alata в течение первых 4 суток мигрируют из желудка в брюшную и грудную полости в легкие, где за 14−16 суток превращаются в метацеркариев, после чего мигрируют в бронхи и трахею, отхаркиваются в ротовую полость, заглатываются и на 30−35 сутки j инвазии в кишечнике* достигают половой зрелости. Некоторая часть мезоцеркариев мигрирует в легкие гематогенным путем, где развивается в метацеркариев. Следовательно, для A. alata плотоядные сначала являются дополнительными (возникает метацеркариозная бронхопневмония), а затем -дефинитивными хозяевами (возникает язвенный энтерит).
9. Аляриоз у плотоядных протекает в острой и хронической формах. Острая форма во времени совпадает с периодом миграции мезоцеркариев из желудка в легкие, формированием в легких метацеркарий и развитием метацеркариозной пневмонии. Хроническая форма аляриоза во времени совпадает с завершением миграции метацеркариев из легких в кишечник и прикреплением половозрелых трематод к стенке тонкого кишечника, сопровождается развитием хронического язвенного энтерита.
Ю. При аляриозе в крови плотоядных снижается концентрация гемоглобина, общего белка, альбуминов, снижается количество эритроцитов, сегментоядерных нейтрофилов, повышаются глобулиновые фракции белка, увеличивается лейкоцитов, эозинофилов, лимфоцитов, палочкоядерных нейтрофилов, возрастает активность ферментов АлАТ, АсАТ, щелочной фосфатазы, > альфа-амилазы, в кишечнике увеличивается факультативная (стафилококки, стрептококки, клостридии, протей, грибы) при значительном снижении индигенной ' микрофлоры (лактобациллы, бифидобактерии, бактероиды). Отмеченные изменения свидетельствуют о глубоком нарушении функции желудочно-кишечного тракта, печени, поджелудочной железы и об иммунологической перестройке организма плотоядных.
11. При аляриозе плотоядных высокоэффективным антгельминтиком является фенбендазол, который дается внутрь в дозе ЗОмг/кг по ДВ два-три дня подряд (ЭЭ=85,7%, ИЭ=95,5%). ЭЭ ивомека плюс (подкожно однократно по 0,150 мл на голову) составляет 71,4% при ИЭ=91%.
ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ
На основании проведенных исследований для дегельминтизации плотоядных при аляриозе предложены фенбендазол (дается с кормом в дозе ЗОмг/кг по ДВ два-три дня подряд) и ивомек плюс (подкожно однократно по 0,150 мл на голову). Научные разработки автора вошли в & laquo-Рекомендации по профилактике аляриоза плотоядных в Российской Федерации& raquo- (утверждены Россельхозакадемией 29 сентября 2005 года).
ЗАКЛЮЧЕНИЕ
Анализ литературы и наши собственные исследования свидетельствуют, что в Европейской части Российской Федерации трематоды Alaria alata паразитируют в тонком отделе кишечника собак, енотовидных собак, лисиц, волков, шакалов, очень редко у хорей. В центральном районе Нечерноземной зоны Российской Федерации половозрелыми трематодами A. alata интенсивно заражены бродячие, бесхозные собаки, волки, лисицы, умеренно — поражены фермерские и крестьянские собаки. На относительно низком уровне находится инвазированность квартирных собак, которых хозяева ежегодно в летний период вывозят на дачные участки. Что же касается собак, которых хозяева кроуглогодично содержат в своих квартирах в гг. Москве и Твери, а также служебных собак, то они практически свободны от этих трематод.
Работы Л. Ф. Потехиной (1950, 1951), В. А. Савинова (1952, 1953), А. Н. Шинкаренко (2005), Ю. Ф. Петрова и др. (2005) и наши данные свидетельствуют, что промежуточными хозяевами трематод Alaria alata являются пресноводные моллюски Planorbis planorbis и Planorbis vortex, в организме которых трематоды проходят стадии материнской спороцисты, редии и церкарии. Вышедшие из организма моллюсков церкарии активно внедряются в головастиков, где по мере метаморфоза последних во взрослых лягушек в мышечной ткани последних формируются мезоцеркарии, которые окружаются тонкой прозрачной капсулой, но у них отсутствуют цисты.
Взрослых инвазированных мезоцеркариями лягушек могут поедать насекомоядные млекопитающие (кроты и ежи) и мышевидные грызуны. В мышечной ткани кротов, ежей и мышей мезодеркарии алярий окружаются тонкой прозрачной капсулой, но у них отсутствуют цисты.
Следовательно, головастики, взрослые лягушки, кроты, ежи и мышевидные грызуны для алярий являются резервуарными хозяевами. Важное место в циркуляции инвазионного начала от первого промежуточного хозяина (пресноводный моллюск) к основному хозяину (плотоядные) занимают головастики и взрослые амфибии из отряда Апига, которые обеспечивают выход церкариев из водоема, что в конечном итоге обеспечивает высокую вероятность попадания их в организм плотоядных.
В естественных условиях заражение плотоядных происходит при поедании ими взрослых лягушек, насекомоядных млекопитающих (кроты, ежи), мышевидных грызунов, в подкожной клетчатке и мышечной ткани которых содержатся мезоцеркарии А. а1а1а. Из желудка плотоядных мезоцеркарии алярий в течение первых 4 суток мигрируют в брюшную, затем грудную полость, попадают в альвеолярную ткань легких, где за 14−16 дней развиваются в метацеркариев, последние мигрируют в бронхи и трахею, отхаркиваются в ротовую полость и на 18−20 сутки попадают в тонкий отдел кишечника и на 34−35 сутки инвазии достигают половой зрелости. По данным В. Б. Ястреба (2007), некоторая часть мезоцеркариев достигает легочной ткани плотоядных гематогенным путем, что нашло подтверждение и в нашей работе.
Наши исследования, проведенные на экспериментально зараженных собаках, показывают, что течение аляриоза следует разделить на две стадии.
Первая — острая стадия во времени совпадает с паразитированием личинок A. alata в альвеолярной ткани легких, превращением здесь их в метацеркариев, миграцией последних в бронхи и трахеюзавершается достижением трематод тонкого отдела кишечника. Эта стадия характеризуется развитием метацеркариозной бронхопневмонии. Вторая — хроническая стадия во времени совпадает с паразитированием половозрелых Alaria alata в тонком отделе кишечника плотоядных, где развивается^ хронический язвенный энтерит.
При& raquo- аляриозе у плотоядных в крови снижается концентрация гемоглобина, общего белка, альбуминов, падает число эритроцитов, сегментоядерных нейтрофилов, увеличивается число лейкоцитов, эозинофилов, лимфоцитов, палочкоядерных нейтрофилов, глобулиновых фракций белка, резко усиливается активность ферментов АлАТ, АсАТ, щелочной фосфатазы, альфа-амилазы, в кишечнике возникает дисбактериоз. Отмеченные изменения свидетельствуют о глубоком нарушении функций органов и систем в организме пораженных аляриями плотоядных. Восстановление функций органов и систем плотоядных наблюдаются на 60−90 сутки после освобождения их от трематод.
Нами впервые для дегельминтизации плотоядных предложены фенбендазол (внутрь по 30−40 мг/кг по ДВ два-три дня подряд) и ивомек плюс (подкожно, однократно по 150 мл на голову).
Показать Свернуть1. 0Б30Р ЛИТЕРАТУРЫ.
2. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ.
2.1. МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ.
2.2. РЕЗУЛБТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ.
2.2.1. ЭПИЗООТОЛОГИЯ АЛЯРИОЗА ПЛОТОЯДНЫХ В ЦЕНТРАЛЬНОМ РАЙОНЕ НЕЧЕРНОЗЕМНОЙ ЗОНЫ РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ 22 2.2.1.1. 3араженность домашних и диких плотоядных половозрелыми трематодами Alaria alata
2.2.1.2. 3араженность пресноводных моллюсков из рода Planorbis личиночными стадиями Alaria alata.
2.2.1.3. Зараженность головастиков и взрослых амфибий из отряда Anura мезоцеркариями Alaria alata.
2.2.1 АЗараженность насекомоядных млекопитающих мезоцеркариями Alaria alata.
2.2.1.5. 3араженность мышевидных грызунов мезоцеркариями Alaria alata.
2.2.2. РАЗВИТИЕ ALAMA ALATA (Schrank, 1788) Krause, 1914 В
ОРГАНИЗМЕ ПЛОТОЯДНЫХ.
2.2.3. ПАТОГЕНЕЗ АЛЯРИОЗА ПЛОТОЯДНЫХ.
2.1.4. ИЗЫСКАНИЕ СРЕДСТВ ДЕГЕЛЬМИНТИЗАЦИИ ПЛОТОЯДНЫХ
ПРИ АЛЯРИОЗЕ.
1. Абалихин Б. Г., Крючкова E.H., Сорокина О. Ю. Паразитофауна лисиц, енотовидных собак и волков в Ивановской области// Матер, научно-практич. конф. & laquo-Проблемы и перспективы развития с/х науки и АПК в современных условиях& raquo-. Иваново, 2004, т. 2, с. 19−20.
2. Абдуллаев Х. С. Формирование паразитарной системы в организме крупного рогатого скота и меры борьбы с паразитозами в Нечерноземной зоне Российской федерации // Дисс. докт. вет. наук, Иваново, 2006, 208с.
3. Архипов И. А. Определение терапевтической эффективности антгельминтиков //Бюлл. ВИГИС., М., 1991, вып. 55, с. 6.
4. Архипов И. А. Эффективность ивомека Плюс при паразитарных заболеваниях крупного рогатого скота // Ветеринарная газета, М., 1995, № 1, с. 6.
5. Архипов И А. Новые отечественные антгельмитики при гельминтозах животных // Ж-Л & laquo-Ветеринария»-, Москва, 1998, № 11, с. 19−31.
6. Архипов И. А. Особенности применения и дозирование антгельминтиков на разных видах животных // Труды ВИГИС, М., 2002, т. 38, с. 19−36.
7. Архипов. И. А. Экспериментальная терапия паразитарных болезней. Проблемы 21 века // Труды ВИГИС, М., 2003, т. 39, с. 9−22.
8. Ю. Архипов И. А., Мусаев М. Б. Выбор антгельминтиков для лечения животных // Ж-л & laquo-Ветеринария»-, М., 2004, № 2, с. 28−33.
9. П. Архипов И А. Антгельминтики: Фармакология и применение // Изд. & laquo-Россельхозакадемия»-, 2009, 406с.
10. Атаев A.M. Эколого-эпизоотологический анализ фасциолеза животных и совершенствование мер борьбы с ним в юго-восточном районе Северного Кавказа// Дисс. докт. вет. наук, М., ВИГИС, 1990, 540с.
11. Аюпов Х. В., Хазиев Г. З. Битионол высокоэффективный антгельминтик // Ж-л & laquo-Ветеринария»-. М., 1974, № 4, с. 84−85.
12. Бессонов A.C. Ветеринарная гельминтология: Проблемы девяностых //ч
13. Ж-л & laquo-Вестник с/х науки& raquo-, М., 1988, № 8(384), с. 78−83.
14. Большакова А. Ю. Эффективность новых отечественных препаратов при мониезиозах овец // Тез. докл. ИСХИ, Иваново, 1993, с. 204.
15. Быкова A.M. Гельминтозы хищных млекопитающих (Canidae, Felidae, Mustelidae) в Омской области и их эколого-фаунистический анализ // Автореф. кандид. диссерт. Тюмень, 2007.
16. Васильев E.H. Биология и плодовитость возбудителей, эпизоотология и терапия нематодозов свиней в крестьянских и фермерских хозяйствах // Автореф. кандид. диссерт. Нижний Новгород, 2004, 25с.
17. Веселова Т. П. Фасциолоцидные антгельминтики: четыреххлористый углерод, гексахлорэтан и гексахлорпараксилол (экспериментальные исследования по эффективности, фармакологии и токсикологии) // Дисс. докт. вет. наук. М., 1968, 361 с.
18. Веселова Т. П., Дорошина М. В., Требухин М. В. Эффективность нового образца гексахлорпараксилола при фасциолезе овец // Бюлл. ВИГИС, М., 1973, в. 10, С. 28−29.
19. Веселова Т. П., Дорошина М. В., Требухин М. В. Гексахлорпараксилол -антгельминтик при гельминтозах животных // Ж-л & laquo-Химия в сельском хозяйстве& raquo-. М., 1974, № 3, С. 60 68.
20. Веселова Т. П., Архипов И. А., Мусаев М. Б. Пути повышения эффективности политрема при трематодозах животных' // Тез. докл. Всесоюзн. конф. & laquo-Методы профилактики и борьбы с трематодами человека и животных& raquo-, Сумы, М., 1991, с. 24.
21. Веселова Т. П., Архипов И. А., Мусаев М. Б. Эффективность куприхола при трематодозах животных // Ж-л & laquo-Ветеринария»-, М., 1994, № 12, с. 7
22. Вислобоков В. А. Стронгилоидоз лошадей в центральном районе Нечерноземной зоны Российской Федерации (биология возбудителя, эпизоотология, патогенез, лечение и профилактика) // Автореф. кандид. диссерт. Иваново, 2009, 21с.
23. Вишняускас А. Ю. Матисоне Е. Поиск эффективной лекарственной формы ацемидофена для групповой дегельминтизации овец при фасциолезе // Тез. докл. Всесоюзн. науч. конф. Сумы, М., 1991, с. 25−26.
24. Вишняускас А. Ю. Терапия фасциолеза овец, фармакокинетика и механизм действия фасциолоцидов // Дисс. докт. вет. наук. М., 1981, 459с.
25. Вишняускас А. Ю., Сируткайтис P.A., Пакятурене Д. А. Салинид — высокоэффективный антгельминтик при хроническом фасциолезе крупного рогатого скота // Труды ВИГИС, М., 1989, т. 30, с. 37−40.
26. Власенко Ю. И. Гельминтофауна диких плотоядных // Сборник научных статьей ФГО|У ВПО & laquo-Ставропольский аграрный университет& raquo-. Ставрополь, 2006, с. 286−287.
27. Власенко Ю. И. Гельминтофауна домашних и диких плотоядных Краснодарского края // Матер, научн. конф. ВОГ РАН & laquo-Теория и практика с паразитарными болезнями& raquo-. М., 2006, вып. 7, с. 93−94.
28. Волков Ф. А. Экологическая безопасность применения ивомека в свиноводческих хозяйствах // Ветеринария. М., 1993, № 7, с. 35−37.
29. Волков Ф. А., Апалькин В. А. Ивермектин в ветеринарии // Новосибирск, 1995, 43с.
30. Волков Ф. А., Апалькин В. А. Ивермектин в ветеринарии. Ивомек, эквалан и другие препараты // Новосибирск, 1995, 34с.
31. Волков Ф. А., Апалькин В. А., Волков Е. А. Паразитарные болезниживотных, птиц и пчел // Справочное пособие, Новосибирск, 1995, 182с.
32. Волков Ф. А., Апалькин В. А., Корешков М. Н. Ивермектин в ветеринарии (ивомек, эквалан и др. препараты) // Новосибирск, 1995, 54с.
33. Волков Ф. А. Паразитозы животных в Сибири и пути их профилактики // Паразиты в природных комплексах и рисковые ситуации. Новосибирск, 1998, с. 3−11.
34. Гаджиев И. Г., Атаева A.M. К фауне гельминтов в Дагестане // Сборник научных статей ФГОУ ВПО & laquo-Ставропольский аграрный университет& raquo-. Ставрополь, 2006, с. 286−287.
35. Гудкова А. Ю, Зубов A.B., Козубович A.B., Рогозина И. Е., Роменский В. И., Трусова A.B. Микрофлора кишечника при гельминтозах (экспериментальное заражение) // Ж-л & laquo-Российский паразитологический журнал& raquo-. М., 2007, № 2, с. 26−29.
36. Гудкова А. Ю. Динамика формирования паразитоценозов в организме овец при гельминтозах и коррекция ее антгельминтиками и пробиотиками // Автореф. докторск. диссерт. Уфа, 1999, 52с.
37. Демидов Н. В. Антгельминтики в ветеринарии // М. & laquo-Колос»-, 1982, 338с.
38. Диденко П. П. Современные аспекты испытания новых антгельминтиков, лекарственных форм их применения и химиотерапия наиболее распространенных гельминтозов овец // Автореф. докторск. диссерт., М., 1993, 40с.
39. Евдокимова JI.M. Материалы к гельминтофауне пушных зверей Татарской АССР // Труды КФАН СССР. Казань, 1954.
40. Енгашев C.B. Разработка и внедрение новых лекарственных форм ветеринарных препаратов для борьбы с паразитарными болезнями // Автореф. докторской диссертации. Саратов, 2002, 52с.
41. Енгашев C.B. Альбен супер высокоэффективный антгельминтик при трематодозах крупного рогатого скота // Ж-л & laquo-Агрорынок»-. М., 2003, с. 20.
42. Крючкова E.H., Сорокина О. Ю., Абалихин Б. Г., Буслаев C.B. Паразитоценозы у некоторых хищников в центральном Нечерноземье
43. Российской Федерации// Матер. Международной конф. & laquo-Актуальные проблемы и перспективы развития агропромышленного комплекса& raquo-. Иваново. 2005, т. 2, с. 35−36.
44. Кузмичев В. В. Фасциолез животных в центральном районе Нечерноземной зоны Российской Федерации (динамика формирования микропаразитоценозов, патогенез, лечение) // Автореф. докт. дисс. Уфа. 1999, 52с.
45. Кузнецов В. М. Мониезиозы жвачных животных в Московской области // Автореф. кандид. диссерт. Иваново, 2004, 20с.
46. Морозов Ф. Н. К факту нахождения инцистированных трематод во внутренних органах хорьковых //Труды Горьковского педагогического института им. Горького, Горький, 1937, т. 1, с. 115−120.
47. Морозов Ф. Н. Паразитические черви пушных зверей Mustelidae (куньих). Горьковской области // Труды Горьковского педагогического института им. Горького, Горький, 1939, т. 4, с. 3−21.
48. Носков С. Б. Противопаразитарные и фармакотоксикологические свойства препарата бенальбен // Автореф. кандид. диссерт. Иваново, 2002, 24с.
49. Петров A.M. Глистные болезни пушных зверей // В/О & laquo-Международная книга& raquo-. М, 1941
50. Петров A.M. Глистные инвазии собак и их санитарное и экономическое значение //Сельхозгиз. Москва-Ленинград, 1931.
51. Петров A.M., Дубницкий A.A. Диагностика, эпизоотология и терапия аляриоза лисиц // Рукопись, ВИГИС, 1949, М
52. Петров Ю. Ф. Паразитоценозы и ассоциативные болезни сельскохозяйственных животных. Ленинград, 1988, 176с.
53. Петров Ю. Ф. Ассоциативные болезни свиней и их профилактика. Иваново, 1994, 55 с.
54. Петров Ю. Ф., Абдуллаев Х. С., Кузнецов В. М., Кузьмичев В. В., Еремеева O.P. Садов K.M., Волков А. Х., Косяев Н. И., Фазлаев Р. Ч. Эффективность антгельминтиков при трематодозах жвачных животных // Ж-л & laquo-Ветеринария»-, М., 2006, № 12, с. 34−37.
55. Петров Ю. Ф., Гудкова А. Ю., Рогозина И. Е., Роменский.В.И., Трусова A.B., Козубович A.B., Коренскова Е. В., Буслаев C.B. Микрофлора кишечника собак в норме и при гельминтозах // Ж-л & laquo-Ветеринарная патология& raquo-. М., 2007, № 2(21), с. 100−103.
56. Петров Ю. Ф., Гудкова А. Ю., Шинкаренко А. Н., Роменский В. И., Рогозина И. Е., Акимова С. А., Трусова A.B. Рекомендации по профилактике аляриоза плотоядных в Российской Федерации // М., Россельхозакадемия, 2005, 7с.
57. Петров Ю. Ф., Зубов A.B. Трусова A.B., Коренскова Е. В., Шахбиев Х. Х. Биология Alaria alata и особенности эпизоотологии аляриоза в Европейской части России // & laquo-Российский паразитологический журнал& raquo-, М., 2008, № 2, с. 35−39.
58. Потехина Л. Ф. Цикл развития возбудителя аляриоза лисиц и собак // Труды ВИГИС, М., 1950, т. 4.
59. Потехина Л. Ф. Цикл развития возбудителя аляриоза пушных зверей // Диссерт. на соиск. учен, степени кандид. биологич. наук. М., ВИГИС, 1950, 87 с.
60. Потехина Л. Ф. Цикл развития возбудителя аляриоза лисиц и собак // Доклады А Н СССР. М., 1951, т. 26, № 2.
61. Ромашов Б. В., Никулин П. И., Лесников А. И. Хищные млекопитающие-резервенты зоонозных гельминтов (на примере лисицы)// Матер. научн. конф. ВОГ РАН & laquo-Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями& raquo-. М., 2009, вып. 10, с. 315−317.
62. Савинов В. А. Развитие Alaria alata в организме собак// Труды ВИГИС, 1953, № 5, с. 63−64.
63. Савинов В. А. Развитие Alaria alata (Goeze, 1782) в организме дефинитивного хозяина//Кандид. дисс., М., ВИГИС, 1952, 145с.
64. Сафиуллин Р. Т., Ревенко A.B. Эффективность панакура при гельминтозах зверей // Ж-л & laquo-Ветеринария»-, М., 2003, № 2, с. 40−42.
65. Скрябин К. И. Строительство советской гельминтологии // Изд. АН СССР. Москва-Ленинград, 1946.
66. Скрябин К. И. Трематодозы животных и человека. Основы трематодологии // Изд. & laquo-Наука»-, АН СССР, М., 1971, том 24.
67. Скрябин К. И., Шульц P.C. Основы общей гельминтологии // Сельхозизд, М., 1940.
68. Троицкая A.A. Гельминтофауна диких пушных зверей в Татарской
69. АССР // Ученые записки Казанского Госуниверситета. Казань, 1960.
70. Троицкая A.A. К изучению гельминтофауны диких пушных зверей Среднего Поволжья и Башкирской АССР // Труды ВНИИОЗ. Киров, 1967.
71. Трусова A.B. Биология Alaria alata // Матер, науч. конф. Костромской ГСХА, Кострома, 2009, том 2, с. 184−186.
72. Трусова A.B. Промежуточные и резервуарные хозяева Alaria alata в Нечерноземной зоне РФ // Матер, науч. конф. Ивановской ГСХА. Иваново, 2009, т.2. С. 215−216.
73. Трусова A.B., Коренскова Е. В. Эффективность антгельминтиков при аляриозе и кренозомозе плотоядных // Матер, науч. конф. ВОГ РАН & laquo-Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями& raquo-. М., 2009, вып. 10.
74. Трусова A.B., Коренскова Е. В., Петров Ю. Ф., Зубов A.B. Паразитофауна собак в Москве и Московской области // Ж-л & laquo-Российский паразитологический журнал& raquo-, М., 2008, № 4, с. 16−18.
75. Трусова A.B., Коренскова Е. В., Петров Ю. Ф., Зубов A.B., Рогозина И. Е., Шахбиев Х. Х. Развитие Alaria alata в организме плотоядных // Матер, науч. конф. ВОГ РАН & laquo-Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями& raquo-. М., 2008, вып. 9, с. 472−474.
76. Хакимов Л. М., Сафиуллин Р. Т., Даугалиева Э. Х. Эффективность альбена-супер, абиктина-порошка и фаскоцида при гельминтозах птиц // Матер, научн. конф. ВОГ РАН & laquo-Теория практика борьбы с паразитарными болезнями& raquo-. М., 2006. вып. 7, с. 422−425.
77. Шахбиев Х. Х. Гельминтофауна плотоядных в Чеченской Республике // Матер, научн. конф. ВОГ РАН & laquo-Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями& raquo-. М., 2008, вып. 9, с. 519−521.
78. Шинкаренко A.B. Экология паразитов собак и меры борьбы с вызываемыми или заболеваниями в Нижнем Поволжье // Автореф. докторск. диссерт. Иваново, 2005, 53с.
79. Якубовский М. В., Мясцова Т. Я. Применение фенбендазола для борьбы с гельминтозами свиней // Вет. наука-производству. Минск, 1983, т. 21, с. 84−88.
80. Якубовский М. В., Мясцова Т. Я. Химиопрофилактика некоторых паразитов свиней // Ветнаука-производству. Минск, 1985, т. 23, с. 80−83.
81. Ястреб В. Б. Способ ранний прижизненной диагностики аляриоза (мезоцеркариоза) у собак и кошек // Патент на изобретение № 2 302 822 от 2007 г.
82. Ястреб В. Б., Абалихин Б. Г., Крючкова E.H. Гельминтофауна дикой природы Центрального региона России// Матер, докл. научн. конф. & laquo-Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями& raquo- ВИГИС. М., вып. 4, 2003, с. 512−514.
83. Batte Е. Evalution of fenbendasole as a swine anthelmintic // Veter. med. Smallanim. Clin. -1978. -p-73.
84. Behrens H. Behandlung des Leberegel tefalls der Schafe mit Hetol // Dtschr. Tierazztl. Wschr. -1960,67,№ 17,s. 467−470.
85. Boray J.C., Jackson R., Strong N.B. Chemoprotilaxis of fasciolasis with triclabendazole // N. Z. VetJ., 1985, v. 33, 11, p. 182−185.
86. Bosma N.S. Alaria mustelae sp. nov. a new Trematode requiring four hoste // Sciense, 1931, 74: 521−522
87. Bosma N.S. The life history of the Trematode Alaria mustelae sp. nov.
88. Transactions of the microscopical Society, 1934, vol. LEU, N2
89. Chander A.C. The morphology and life cyrcle of a new strigeidae Fibricola texensis // Transactions of the american microscopical Society, 1942, vol. LXI, N2, pp. 156−157
90. Corba J., Hovozca J., Spaldonova R., Sloffa R., Legeny J., Andrasko N. Efficany of Luxabendaxole (Hoe 216v) Susp. 5% in sheep naturally infected with the most important helminths // J. Helminthologia, 1987, № 24, p. 227−235.
91. Cuckler A.C. Studies on the Migrations and Development of Alaria spp. (Trematoda: Strigeata) in the Definitive Host // Journ. of Parasitology, 1940, N 26, N6, p. 36
92. Cuckler A.C. The life circle of Fibricola cratera (Barker and Noll, 1915) Dubois, 1932 // Journal of Parasitology, 1940, N26, p. 32.
93. Dorchies Ph. Efficacy of a single treatment at housing with valbazen against fluke in festation and comparison with a second or a treatment with a specifis flukicide // Biologia, 1993, №l, p. 91−93.
94. Dubois G. Monographie des Strigeida (Trematoda) // Nemoiress de la Societe Neuchofeloise des sciences natuzales, 1938, t. Vp.
95. Enigk K. et all. Weitere Erfahrungen mit Fenbencaxol bei oler Bekampfungides Magen-Darm-Nematodenbefalle beim shwein Tierrozt // Umsch, 1973, 32, p. 414−420.
96. Enigk K., Duwel D. Die Behandlung der Fasciolose beim Rinde mit Hetol// Deutsche Tierazztl. Wschr., 1960,67,s. 535−540.
97. Jamaguti S. Systema Helminthum: 1. The digenetic treinatodcs of vertebratis // N. J. j 1958, 1−1575
98. Jamaguti S. Transactions Studies on the He*lminth-Fauna of Japan. Pt. 25. Trematodes of birds // Japan J. Zool., 1939, 8 (2): 129−210
99. Kearney A., Connoly J.P., Downey HE. Serum transaminase levels in treated Fasciola hepatica infected seep // Vet. Ree., 1967, v. 81, p. 134−139.
100. Kendall S. Epidemiology and control of fasciolasis // Acta Veterin., 1960, m. 10, F. 8, p. l-12. v
101. Kobulej T., Jaszberenyi E., Janisen M. A hazai eloallitasu albendasol fasciolicid hatasanak tanulmaniozasa termeszeteson fertozott juhkban es. szasvas marhalcban // Magyar allatorv. Lapja 1958, m. 40, N8- p. 451−453.
102. Kuttler K.L., Matthews N. 15, Marble D.W. Comparative therapeutic efficacy of Carbon Tetrachloride. Hexachloroethane and ME 3625 in Fasciola hepatica infections of sheep //Amcr. J. Vet. Res., 1963, v. 24, p. 52−58.
103. Lutz A. Consideracoes sobra o Distomum tetracystis Gastaldi e formas semechantes, erzoneamente chamadas Agamodistomos // Mem: Inst. Oswaldo Cruz. Rio de laneiro, 1933, 27, p. 33−49.
104. Quan D.X., Liang X.E., Xiang D.H. Efficacy of nitroxinil and albendazole against helminths of the intestinal tract of dairy gouts // Chinese Journal of Vet. Sciens and Technology. 1991, v. 21, № 7, p. 36−37.
105. Reitman S. Frenkels. A. Colorimetric method for the determination of serum glutomic acetic and glutamic pyruvie transaminoses.
106. Ruszkowski M.Y. Die Postembrionale Entwicklung von Hemistomum alatum. Dies aut grand experimentaller Untersuchungen // Bulleten International de L’Academie Polonoise des sciences et des lettze, Serie B., Sciences Naturales, 1922, pp. 237−250.
107. Stewart T.B., Rowelo T.J. Susceptibility of forth — stage Ascaris suum larvae to fenbendasole and host response in the pig // Amer.J. Vet. Res., 1986, 47, № 8, p. 1671−1673.
108. Zaznowski E., Fagasineki A., Linobury A. Swin warunkach tucsu presemyslowege // Mowosed Woter. -1982, 12, № 3. -p. l33−137.
gugn.ru
Заболевание плотоядных, поражающее легкие и кишечник.
Возбудитель
Alaria alata.
Распространённость
Европа и Азия.
Хозяин
Дикоживущие плотоядные, а также собаки и кошки.
Морфология и цикл развития
Т
Рис. 6: Трематода Alaria alata.
рематоды имеют типичную форму туфельки. Достигают размеров 3 - 6 х 1 - 2 мм (См. рис.6). В передней части тела, за брюшной присоской расположен орган Брандеса, выделяющий протеолитические энзимы, которыми разрушается слизистая кишечника хозяина. Мезоцеркарии размером 0,4 - 0,7 х 0,2 мм, полупрозрачные с подковообразным кишечником. Яйца желто-зеленого цвета, размером 100-120 х 70 μм.У водных моллюсков семейства Planorbidea образуются фуркоцеркарии (с расщепленным хвостиком), после высвобождения они проникают во второго промежуточного хозяина, которым являются лягушки, в мышцах которых они инцистируются в мезоцеркарий. Эти стадии могут развиваться и у других животных, например у пресмыкающихся, птиц и млекопитающих. У диких свиней можно найти мезоцеркарии в мышцах, например при трихинеллоскопии, где они известны под названием Agamodistomum suis. При поедании этих цист разные животные, а также человек становятся паратеническими хозяевами в которых развиваются метацеркарии свободно или в цистах. Дефинитивный хозяин заражается при поедании второго промежуточного (дополнительного) хозяина или паратенического (резервуарного) хозяина. Молодые трематоды мигрируют через бронхи в легкие, где образуют цисты. Через несколько недель они мигрируют в ротовую полость, и далее проглатываются. В кишечнике происходит половое созревание.
При миграции происходит повреждение лёгких, которое проявляется нарушениями дыхания. Взрослые особи раздражают и травмируют слизистую оболочку кишечника с последующими нарушениями пищеварения. У паратенических хозяев обнаруживают мезоцеркарии в тёмно-красных узелках или в прозрачных цистах.
Диагностика
Диагноз подтверждается при микроскопическом исследовании кала и нахождении яиц алярий. У паратенических хозяев необходимо отличить метоцеркарии от трихинелл, саркоцист, а также от туберкулеза.
Лечение
Лечение аналогично предыдущим трематодозам.
Предупреждение
Диагностику трематодозов плотоядных в большинстве случаев проводят классическим флотоционным методом, потому что яйца типичных представителей относительно маленькие. При подозрении на фасциолёз, нетипичный для плотоядных, пользуются седиментационным методом.
Цестодозы - это заболевания, вызываемые плоскими гельминтами. У собак и кошек это очень частые заболевания, с ними сталкиваются у всех возрастных категорий животных. В городах чаще всего встречается Dipylidium caninum. Свободно передвигающиеся собаки и кошки часто являются хозяевами для разных видов из рода Taenia, например Taenia pisiformis у кроликов, Taenia Taeniaformis и т. п. В наших условиях этих паразитов необходимо учитывать даже у старых собак, у которых вся другая паразитическая фауна редка. Взрослые цестоды, находящиеся в кишечнике собак и кошек очень редко вызывают серьёзные заболевания с клиническими признаками.
Интенсивность клинических признаков зависит от количества паразитов, размеров и вида цестод, возраста хозяина, его упитанности и условий содержания. Симптомы колеблются от вялости до чрезмерного раздражения, повышенного извращенного аппетита. Проявляется в виде колик, умеренного слизистого поноса, ухудшенного качества шерсти и т. п. Одним из типичных признаков является так называевая «езда на санках» - когда собака трётся задом о землю в попытке уменьшить раздражение вызываемое выходом зрелых члеников. Это проявление, однако, характерно и для переедания или при воспалении параанальных желез.
Диагностика обычных цестод довольно таки проста, поскольку проглоттиды, находящиеся на поверхности кала, хорошо заметны невооруженным глазом. Часто членики прилипают к шерсти под хвостом или спадают на подстилку.
Лечение в большинстве случаев можно выбрать без уточнения вида цестоды. Более точные результаты, необходимые для защиты от реинвазии, можно получить из анамнестических данных. Однако морфология члеников может быть похожа на непереваренные остатки пищи, например овсяные хлопья, рис или личинки мух. Точную идентификацию цестод можно провести только микроскопически. Членик ополаскивают водой, переносят на предметное стекло и прижимают другим предметным стеклом. Для лучшей ориентации можно поместить членик в осветляющий раствор, например глицерина, молочной кислоты или жидкости Фаурэ. Если членик достаточно сухой (например, прилипший к шерсти вокруг ануса), его помещают в сосуд, заливают водой и оставляют набухнуть. По характерной форме зрелого членика определяют родовую принадлежность паразита. При общем исследовании кала членики растирают и применяют концентрационный флотационный метод. Микроскопически наблюдают высвобождённые яйца или коконы. Необходимо уведомить хозяев, чтобы они приносили кал, содержащий подозрительные членики, потому что выделение зрелых проглоттид нерегулярно.
Схема цикла развития лентецов
Половозрелый
паразит
В окончательном
хозяине
studfiles.net
1. Абалихин Б.Г., Крючкова E.H., Сорокина О.Ю. Паразитофауна лисиц, енотовидных собак и волков в Ивановской области// Матер, научно-практич. конф. «Проблемы и перспективы развития с/х науки и АПК в современных условиях». Иваново, 2004, т.2, с.19-20.
2. Абдуллаев Х.С. Формирование паразитарной системы в организме крупного рогатого скота и меры борьбы с паразитозами в Нечерноземной зоне Российской федерации // Дисс.докт. вет. наук, Иваново, 2006, 208с.
3. Архипов И.А. Определение терапевтической эффективности антгельминтиков //Бюлл. ВИГИС., М., 1991, вып. 55, с. 6.
4. Архипов И.А. Эффективность ивомека Плюс при паразитарных заболеваниях крупного рогатого скота // Ветеринарная газета, М., 1995, №1, с.6.
5. Архипов ИА. Новые отечественные антгельмитики при гельминтозах животных // Ж-Л «Ветеринария», Москва, 1998, № 11, с. 19-31.
6. Архипов И.А. Особенности применения и дозирование антгельминтиков на разных видах животных // Труды ВИГИС, М., 2002, т.38, с. 19-36.
7. Архипов. И.А. Экспериментальная терапия паразитарных болезней. Проблемы 21 века // Труды ВИГИС, М., 2003, т. 39, с. 9-22.
8. Ю.Архипов И.А., Мусаев М.Б. Выбор антгельминтиков для лечения животных // Ж-л «Ветеринария», М., 2004, №2, с.28-33.
9. П.Архипов И А. Антгельминтики: Фармакология и применение // Изд. «Россельхозакадемия», 2009, 406с.
10. Атаев A.M. Эколого-эпизоотологический анализ фасциолеза животных и совершенствование мер борьбы с ним в юго-восточном районе Северного Кавказа// Дисс.докт. вет. наук, М., ВИГИС, 1990, 540с.
11. Аюпов Х.В., Хазиев Г.З. Битионол высокоэффективный антгельминтик // Ж-л «Ветеринария». М., 1974, №4, с.84-85.
12. Бессонов A.C. Ветеринарная гельминтология: Проблемы девяностых //ч
13. Ж-л «Вестник с/х науки», М., 1988, №8(384), с.78-83.
14. Большакова А.Ю. Эффективность новых отечественных препаратов при мониезиозах овец // Тез. докл. ИСХИ, Иваново, 1993, с. 204.
15. Быкова A.M. Гельминтозы хищных млекопитающих (Canidae, Felidae, Mustelidae) в Омской области и их эколого-фаунистический анализ // Автореф. кандид. диссерт. Тюмень, 2007.
16. Васильев E.H. Биология и плодовитость возбудителей, эпизоотология и терапия нематодозов свиней в крестьянских и фермерских хозяйствах // Автореф. кандид. диссерт. Нижний Новгород, 2004, 25с.
17. Веселова Т. П. Фасциолоцидные антгельминтики: четыреххлористый углерод, гексахлорэтан и гексахлорпараксилол (экспериментальные исследования по эффективности, фармакологии и токсикологии) // Дисс. . докт. вет. наук. М., 1968, 361 с.
18. Веселова Т.П., Дорошина М.В., Требухин М.В. Эффективность нового образца гексахлорпараксилола при фасциолезе овец // Бюлл. ВИГИС, М., 1973, в.10, С.28-29.
19. Веселова Т.П., Дорошина М.В., Требухин М.В. Гексахлорпараксилол -антгельминтик при гельминтозах животных // Ж-л «Химия в сельском хозяйстве». М., 1974, №3, С.60 68.
20. Веселова Т.П., Архипов И.А., Мусаев М.Б. Пути повышения эффективности политрема при трематодозах животных' // Тез. докл. Всесоюзн. конф. «Методы профилактики и борьбы с трематодами человека и животных», Сумы, М., 1991, с.24.
21. Веселова Т.П., Архипов И. А., Мусаев М.Б. Эффективность куприхола при трематодозах животных // Ж-л «Ветеринария», М., 1994, №12, с.7
22. Вислобоков В.А. Стронгилоидоз лошадей в центральном районе Нечерноземной зоны Российской Федерации (биология возбудителя,эпизоотология, патогенез, лечение и профилактика) // Автореф. кандид. диссерт. Иваново, 2009, 21с.
23. Вишняускас А.Ю. Матисоне Е. Поиск эффективной лекарственной формы ацемидофена для групповой дегельминтизации овец при фасциолезе // Тез. докл. Всесоюзн. науч. конф. Сумы, М., 1991, с.25-26.
24. Вишняускас А.Ю. Терапия фасциолеза овец, фармакокинетика и механизм действия фасциолоцидов // Дисс. докт. вет. наук. М., 1981, 459с.
25. Вишняускас А.Ю., Сируткайтис P.A., Пакятурене Д.А. Салинид — высокоэффективный антгельминтик при хроническом фасциолезе крупного рогатого скота // Труды ВИГИС, М., 1989, т. 30, с.37-40.
26. Власенко Ю.И. Гельминтофауна диких плотоядных // Сборник научных статьей ФГО|У ВПО «Ставропольский аграрный университет». Ставрополь, 2006, с. 286-287.
27. Власенко Ю.И. Гельминтофауна домашних и диких плотоядных Краснодарского края // Матер, научн. конф. ВОГ РАН «Теория и практика с паразитарными болезнями». М., 2006, вып. 7, с. 93-94.
28. Волков Ф.А. Экологическая безопасность применения ивомека в свиноводческих хозяйствах // Ветеринария. М., 1993, №7, с. 35-37.
29. Волков Ф.А., Апалькин В.А. Ивермектин в ветеринарии // Новосибирск, 1995, 43с.
30. Волков Ф.А., Апалькин В.А. Ивермектин в ветеринарии. Ивомек, эквалан и другие препараты // Новосибирск, 1995, 34с.
31. Волков Ф.А., Апалькин В.А., Волков Е.А. Паразитарные болезниживотных, птиц и пчел // Справочное пособие, Новосибирск, 1995, 182с.
32. Волков Ф.А., Апалькин В.А., Корешков М.Н. Ивермектин в ветеринарии (ивомек, эквалан и др. препараты) // Новосибирск, 1995, 54с.
33. Волков Ф.А. Паразитозы животных в Сибири и пути их профилактики // Паразиты в природных комплексах и рисковые ситуации. Новосибирск, 1998, с.3-11.
34. Гаджиев И.Г., Атаева A.M. К фауне гельминтов в Дагестане // Сборник научных статей ФГОУ ВПО «Ставропольский аграрный университет». Ставрополь, 2006, с. 286-287.
35. Гудкова А.Ю, Зубов A.B., Козубович A.B., Рогозина И.Е., Роменский В.И., Трусова A.B. Микрофлора кишечника при гельминтозах (экспериментальное заражение) // Ж-л «Российский паразитологический журнал». М., 2007, №2, с.26-29.
36. Гудкова А.Ю. Динамика формирования паразитоценозов в организме овец при гельминтозах и коррекция ее антгельминтиками и пробиотиками // Автореф. докторск. диссерт. Уфа, 1999, 52с.
37. Демидов Н.В. Антгельминтики в ветеринарии // М. «Колос», 1982, 338с.
38. Диденко П.П. Современные аспекты испытания новых антгельминтиков, лекарственных форм их применения и химиотерапия наиболее распространенных гельминтозов овец // Автореф. докторск. диссерт., М., 1993, 40с.
39. Евдокимова JI.M. Материалы к гельминтофауне пушных зверей Татарской АССР // Труды КФАН СССР. Казань, 1954.
40. Енгашев C.B. Разработка и внедрение новых лекарственных форм ветеринарных препаратов для борьбы с паразитарными болезнями // Автореф. докторской диссертации. Саратов, 2002, 52с.
41. Енгашев C.B. Альбен супер высокоэффективный антгельминтик при трематодозах крупного рогатого скота // Ж-л «Агрорынок». М., 2003, с. 20.
42. Крючкова E.H., Сорокина О.Ю., Абалихин Б.Г., Буслаев C.B. Паразитоценозы у некоторых хищников в центральном Нечерноземье
43. Российской Федерации// Матер. Международной конф. «Актуальные проблемы и перспективы развития агропромышленного комплекса». Иваново. 2005, т. 2, с. 35-36.
44. Кузмичев В.В. Фасциолез животных в центральном районе Нечерноземной зоны Российской Федерации (динамика формирования микропаразитоценозов, патогенез, лечение) // Автореф. докт. дисс. Уфа. 1999, 52с.
45. Кузнецов В.М. Мониезиозы жвачных животных в Московской области // Автореф. кандид. диссерт. Иваново, 2004, 20с.
46. Морозов Ф.Н. К факту нахождения инцистированных трематод во внутренних органах хорьковых //Труды Горьковского педагогического института им. Горького, Горький, 1937, т. 1, с. 115-120.
47. Морозов Ф.Н. Паразитические черви пушных зверей Mustelidae (куньих). Горьковской области // Труды Горьковского педагогического института им. Горького, Горький, 1939, т. 4, с. 3-21.
48. Носков С.Б. Противопаразитарные и фармакотоксикологические свойства препарата бенальбен // Автореф. кандид. диссерт. Иваново, 2002, 24с.
49. Петров A.M. Глистные болезни пушных зверей // В/О «Международная книга». М, 1941
50. Петров A.M. Глистные инвазии собак и их санитарное и экономическое значение //Сельхозгиз. Москва-Ленинград, 1931.
51. Петров A.M., Дубницкий A.A. Диагностика, эпизоотология и терапия аляриоза лисиц // Рукопись, ВИГИС, 1949, М
52. Петров Ю.Ф. Паразитоценозы и ассоциативные болезни сельскохозяйственных животных. Ленинград, 1988, 176с.
53. Петров Ю.Ф. Ассоциативные болезни свиней и их профилактика. Иваново, 1994, 55 с.
54. Петров Ю.Ф., Абдуллаев Х.С., Кузнецов В.М., Кузьмичев В.В., Еремеева O.P. Садов K.M., Волков А.Х., Косяев Н.И., Фазлаев Р.Ч. Эффективность антгельминтиков при трематодозах жвачных животных // Ж-л «Ветеринария», М., 2006, №12, с. 34-37.
55. Петров Ю.Ф., Гудкова А.Ю., Рогозина И.Е., Роменский.В.И., Трусова A.B., Козубович A.B., Коренскова Е.В., Буслаев C.B. Микрофлора кишечника собак в норме и при гельминтозах // Ж-л «Ветеринарная патология». М., 2007, №2(21), с.100-103.
56. Петров Ю.Ф., Гудкова А.Ю., Шинкаренко А.Н., Роменский В.И., Рогозина И.Е., Акимова С. А., Трусова A.B. Рекомендации по профилактике аляриоза плотоядных в Российской Федерации // М., Россельхозакадемия, 2005, 7с.
57. Петров Ю.Ф., Зубов A.B. Трусова A.B., Коренскова Е.В., Шахбиев Х.Х. Биология Alaria alata и особенности эпизоотологии аляриоза в Европейской части России // «Российский паразитологический журнал», М., 2008, №2, с. 35-39.
58. Потехина Л.Ф. Цикл развития возбудителя аляриоза лисиц и собак // Труды ВИГИС, М., 1950, т. 4.
59. Потехина Л.Ф. Цикл развития возбудителя аляриоза пушных зверей // Диссерт. на соиск. учен, степени кандид. биологич. наук. М., ВИГИС,1950, 87 с.
60. Потехина Л.Ф. Цикл развития возбудителя аляриоза лисиц и собак // Доклады АН СССР. М., 1951, т. 26, № 2.
61. Ромашов Б.В., Никулин П.И., Лесников А.И. Хищные млекопитающие-резервенты зоонозных гельминтов (на примере лисицы)// Матер.научн. конф. ВОГ РАН «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями». М., 2009, вып.10, с.315-317.
62. Савинов В.А. Развитие Alaria alata в организме собак// Труды ВИГИС, 1953, №5, с.63-64.
63. Савинов В.А. Развитие Alaria alata (Goeze, 1782) в организме дефинитивного хозяина//Кандид.дисс., М., ВИГИС, 1952, 145с.
64. Сафиуллин Р.Т., Ревенко A.B. Эффективность панакура при гельминтозах зверей // Ж-л «Ветеринария», М., 2003, №2, с.40-42.
65. Скрябин К.И. Строительство советской гельминтологии // Изд. АН СССР. Москва-Ленинград, 1946.
66. Скрябин К.И. Трематодозы животных и человека. Основы трематодологии // Изд. «Наука», АН СССР, М., 1971, том 24.
67. Скрябин К.И., Шульц P.C. Основы общей гельминтологии // Сельхозизд, М., 1940.
68. Троицкая A.A. Гельминтофауна диких пушных зверей в Татарской
69. АССР // Ученые записки Казанского Госуниверситета. Казань, 1960.
70. Троицкая A.A. К изучению гельминтофауны диких пушных зверей Среднего Поволжья и Башкирской АССР // Труды ВНИИОЗ. Киров, 1967.
71. Трусова A.B. Биология Alaria alata // Матер, науч. конф. Костромской ГСХА, Кострома, 2009, том 2, с.184-186.
72. Трусова A.B. Промежуточные и резервуарные хозяева Alaria alata в Нечерноземной зоне РФ // Матер, науч. конф. Ивановской ГСХА. Иваново, 2009, т.2. С. 215-216.
73. Трусова A.B., Коренскова Е.В. Эффективность антгельминтиков при аляриозе и кренозомозе плотоядных // Матер, науч. конф. ВОГ РАН «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями». М., 2009, вып. 10.
74. Трусова A.B., Коренскова Е.В., Петров Ю.Ф., Зубов A.B. Паразитофауна собак в Москве и Московской области // Ж-л «Российский паразитологический журнал», М., 2008, №4, с.16-18.
75. Трусова A.B., Коренскова Е.В., Петров Ю.Ф., Зубов A.B., Рогозина И.Е., Шахбиев Х.Х. Развитие Alaria alata в организме плотоядных // Матер, науч. конф. ВОГ РАН «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями». М., 2008, вып.9, с.472-474.
76. Хакимов Л.М., Сафиуллин Р.Т., Даугалиева Э.Х. Эффективность альбена-супер, абиктина-порошка и фаскоцида при гельминтозах птиц // Матер, научн. конф. ВОГ РАН «Теория практика борьбы с паразитарными болезнями». М., 2006. вып. 7, с. 422-425.
77. Шахбиев Х.Х. Гельминтофауна плотоядных в Чеченской Республике // Матер, научн. конф. ВОГ РАН «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями». М., 2008, вып. 9, с. 519-521.
78. Шинкаренко A.B. Экология паразитов собак и меры борьбы с вызываемыми или заболеваниями в Нижнем Поволжье // Автореф. докторск. диссерт. Иваново, 2005, 53с.
79. Якубовский М.В., Мясцова Т.Я. Применение фенбендазола для борьбы с гельминтозами свиней // Вет.наука-производству. Минск, 1983, т. 21, с. 84-88.
80. Якубовский М.В., Мясцова Т.Я. Химиопрофилактика некоторых паразитов свиней // Ветнаука-производству. Минск, 1985, т. 23, с. 80-83.
81. Ястреб В.Б. Способ ранний прижизненной диагностики аляриоза (мезоцеркариоза) у собак и кошек // Патент на изобретение №2302822 от 2007 г.
82. Ястреб В.Б., Абалихин Б.Г., Крючкова E.H. Гельминтофауна дикой природы Центрального региона России// Матер, докл. научн. конф. «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями» ВИГИС. М., вып. 4, 2003, с. 512-514.
83. Batte Е. Evalution of fenbendasole as a swine anthelmintic // Veter. med. Smallanim. Clin.-1978.-p-73.
84. Behrens H. Behandlung des Leberegel tefalls der Schafe mit Hetol // Dtschr. Tieräzztl. Wschr.-1960,67,№17,s.467-470.
85. Boray J.C., Jackson R., Strong N.B. Chemoprotilaxis of fasciolasis with triclabendazole // N. Z. VetJ., 1985, v.33, 11, p.182-185.
86. Bosma N.S. Alaria mustelae sp. nov.a new Trematode requiring four hoste // Sciense, 1931, 74: 521-522
87. Bosma N.S. The life history of the Trematode Alaria mustelae sp. nov.
88. Transactions of the microscopical Society, 1934, vol. LEU, N2
89. Chander A.C. The morphology and life cyrcle of a new strigeidae Fibricola texensis // Transactions of the american microscopical Society, 1942, vol. LXI, N2, pp. 156-157
90. Corba J., Hovozca J., Spaldonova R., Sloffa R., Legeny J., Andrasko N. Efficany of Luxabendaxole (Hoe 216v) Susp. 5% in sheep naturally infected with the most important helminths // J. Helminthologia, 1987, №24, p. 227-235.
91. Cuckler A.C. Studies on the Migrations and Development of Alaria spp. (Trematoda: Strigeata) in the Definitive Host // Journ. of Parasitology, 1940, N 26, N6, p. 36
92. Cuckler A.C. The life circle of Fibricola cratera (Barker and Noll, 1915) Dubois, 1932 // Journal of Parasitology, 1940, N26, p. 32.
93. Dorchies Ph. Efficacy of a single treatment at housing with valbazen against fluke in festation and comparison with a second or a treatment with a specifis flukicide // Biologia, 1993, №l,p.91-93.
94. Dubois G. Monographie des Strigeida (Trematoda) // Nemoiress de la Societe Neuchofeloise des sciences natuzales, 1938, t. Vp.
95. Enigk K. et all. Weitere Erfahrungen mit Fenbencaxol bei oler Bekämpfungides Magen-Darm-Nematodenbefalle beim shwein Tierrozt // Umsch, 1973, 32, p. 414-420.
96. Enigk K., Düwel D. Die Behandlung der Fasciolose beim Rinde mit Hetol// Deutsche Tieräzztl. Wschr.,1960,67,s.535-540.
97. Jamaguti S. Systema Helminthum: 1. The digenetic treinatodcs of vertebratis // N. J.j 1958, 1-1575
98. Jamaguti S. Transactions Studies on the He*lminth-Fauna of Japan. Pt. 25. Trematodes of birds // Japan J. Zool., 1939, 8 (2): 129-210
99. Kearney A., Connoly J.P., Downey HE. Serum transaminase levels in treated Fasciola hepatica infected seep // Vet. Ree., 1967, v.81, p.134-139.
100. Kendall S. Epidemiology and control of fasciolasis // Acta Veterin., 1960,m. 10, F.8,p.l-12. v
101. Kobulej T., Jaszberenyi E., Janisen M. A hazai eloallitasu albendasol fasciolicid hatasanak tanulmaniozasa termeszeteson fertozott juhkban es. szasvas marhalcban // Magyar allatorv. Lapja 1958, m. 40, N8- p. 451-453.
102. Kuttler K.L., Matthews N.15, Marble D.W. Comparative therapeutic efficacy of Carbon Tetrachloride. Hexachloroethane and ME 3625 in Fasciola hepatica infections of sheep //Amcr. J. Vet. Res., 1963, v.24, p.52-58.
103. Lutz A. Consideracoes sobra o Distomum tetracystis Gastaldi e formas semechantes, erzoneamente chamadas Agamodistomos // Mem: Inst. Oswaldo Cruz. Rio de laneiro, 1933, 27, p. 33-49.
104. Quan D.X., Liang X.E., Xiang D.H. Efficacy of nitroxinil and albendazole against helminths of the intestinal tract of dairy gouts // Chinese Journal of Vet. Sciens and Technology. 1991, v. 21, №7, p. 36-37.
105. Reitman S. Frenkels. A. Colorimetric method for the determination of serum glutomic acetic and glutamic pyruvie transaminoses.
106. Ruszkowski M.Y. Die Postembrionale Entwicklung von Hemistomum alatum. Dies aut grand experimentaller Untersuchungen // Bulleten International de L'Academie Polonoise des sciences et des lettze, Serie B., Sciences Naturales, 1922, pp. 237-250.
107. Stewart T.B., Rowelo T.J. Susceptibility of forth — stage Ascaris suum larvae to fenbendasole and host response in the pig // Amer.J. Vet. Res., 1986, 47, №8, p.1671-1673.
108. Zaznowski E., Fagasineki A., Linobury A. Swin warunkach tucsu presemyslowege // Mowosed Woter.-1982, 12, №3.-p.l33-137.
www.dissercat.com
УДК 619: 616. 995. 122БИОЛОГИЯ ALARIA ALATA И ОСОБЕННОСТИ ЭПИЗООТОЛОГИИ АЛЯРИОЗА В ЕВРОПЕЙСКОЙ ЧАСТИ РОССИИЮ.Ф. ПЕТРОВ академик РАСХН А.В. ЗУБОВ кандидат ветеринарных наук А.В. ТРУСОВА, Е.В. КОРЕНСКОВА, Х.Х. ШАХБИЕВаспирантыИвановская государственная сельскохозяйственная академияимени Д.К. БеляеваВ Европейской части России аляриоз регистрируют у бродячих и квартирных собак, волков и лис. Изучено развитие Alaria alata в организме дефинитивного, промежуточного и дополнительного хозяев. При аляриозе у плотоядных отмечают нарушение функций органов и систем. Фенбендазол в дозе 40×3 мг/кг показал 100%-ную эффективность против A. alata.Ключевые слова: аляриоз, Alaria alata, плотоядные, биология, фенбендазол.Среди паразитарных болезней домашних и диких плотоядных аляри-оз, вызываемый трематодой Alaria alata (Schrank, 1788) Krause, 1914, широко распространен и наносит существенный ущерб пушному звероводству. В настоящее время различают легочную и кишечную формы аляриоза, которые совпадают с периодами развития паразита. Кроме того, мезоцерка-рии и метацеркарии алярий способны паразитировать в организме человека, вызывая бронхопневмонию [1−9]. В связи с этим представляет большой интерес детальное изучение биологии возбудителя, эпизоотологии, патогенеза заболевания и методов лечения плотоядных.Материалы и методыЭпизоотологию аляриоза изучали в 2002—2007 гг. путем гельминтологи-ческого вскрытия печени, селезенки, кишечника, легких, лимфатических желез грудной и брюшной полостей, крови 158 бродячих, 36 квартирных, 22 служебных собак, а также 12 барсуков, 1 куницы, 2 норок, 8 волков, 15 лисиц, добытых охотниками Московской, Ярославской, Владимирской областей и Чеченской Республики. Определяли экстенсивность (ЭИ) и интенсивность инвазии (ИИ). Кроме того, в марте-ноябре 2002−2007 гг. исследовали 9846 экз. моллюсков Planorbis planorbis, 8868 головастиков и 713 взрослых амфибий из отряда Anu-ra (серая лягушка Rana lessonae, 1882- озерная лягушка R. ribibunda, 1771- травяная лягушка R. temporaria, 1758- остромордая лягушка R. arvalis, 1842- серая жаба Bufo bufo, 1758).Развитие A. alata в организме плотоядных изучали на 16 щенках, свободных от гельминтов, которых заражали аляриями путем пероральной дачи по 90 мезоцеркариев, изолированных из мышечной ткани взрослых зараженных лягушек. Результаты учитывали спустя 24, 36, 48 часов и через 4, 8, 12, 18, 20, 28, 30 и 35-е суток после заражения.У экспериментально инвазиро-ванных плотоядных гематологические и биохимические исследования проводили на 5, 10, 20, 30, 45, 60 и 90-е сутки после заражения. Спустя 3 мес пять оставшихся плотоядных дегель-минтизировали фенбендазолом в дозе 40 мг/кг по ДВ 3 дня подряд, после чего исследования продолжили на 30, 60 и 90-е сутки.Активность аланинаминотранс-феразы (АлАТ) и аспартатами-нотрансферазы (АсАТ) в сыворотке крови определяли по Reitman, Frankel (1957) в модификации Капетанаки (1962), щелочной фосфатазы — по Bo-dansky (1933), альфа-амилазы — по Покровскому, Щербаковой (1964), общий белок — рефрактометрическим методом, отдельные фракции белка — экспресс-методом.Полученные результаты обработаны статистически.Результаты и обсуждениеВ условиях Нечерноземной зоны России трематод A. alata изолированы нами из тонкого кишечника бродячих (ЭИ=20,7%, интенсивность инвазии 24,8±1,2 экз.) и квартирных собак (7,7%, 4,6±0,4 экз.), волков (75%, 82,4±0,4 экз.), лис (93,3%, 108,1±0,2 экз.).В условиях Чеченской Республики алярии изолированы из кишечникаРоссийский паразитологический журнал, 2008, № 2бродячих (ЭИ=100%, ИИ=32,6±2,2 экз.), фермерских (100%, 18,4±1,8 экз.) и квартирных собак (26,8%, 5,8±0,8 экз.), волков (100%, 88,4±3,8 экз.), лис (100%, 18,4±1,2 экз.).Служебные собаки в специализированных питомниках во всех регионах, а также барсуки, куницы и норки были свободны от алярий.Церкарии A. alata изолировали из организма моллюсков Planorbis planorbis (в Нечерноземной зоне ЭИ =2,6%, в Чеченской Республике — 3,2%) в марте-августе. Относительно высокую зараженность (4,8−9,8%) планор-бид регистрировали в марте-июне в мелких, неглубоких, хорошо прогреваемых прудах и озерах, низкую (0,4-0,8%) — в средних и крупных водоемах. Мезоцеркарий алярий обнаружили у головастиков и взрослых бесхвостых амфибий: у серой (9,5−12,8%), травяной (13,1−15,8%), остромордой лягушки (4,1−5,8%) и серой жабы (5,3−8,2%). Мезоцеркарии мышечной ткани бесхвостых амфибий окружены тонкой прозрачной капсулой, но циста не сформирована.У щенка спустя 24 ч после заражения мезоцеркарии (12 экз.) обнаружены на серозной оболочке брюшной полости (на капсуле печени, желудка, диафрагме), через 36 ч — только в грудной полости (на перикарде, поверхности легких, всего 9 экз.). Личинки (18 экз.), обнаруженные в легочной ткани спустя 4 сут, имели признаки закладки органа Брандеса, по бокам ротовой присоски были заметны зачатки ушковидных придатков. Спустя 8 сут у личинок железы проникновения отсутствовали, обнаружены «ушки» и половой зачаток лопастной- размер личинок составил 0,8921,14×0,552−0,648 мм. На 18-е сут ме-тацеркарии (14 экз.) имели длину 1,226±0,086 и ширину 0,482±0,017 мм: тело их состояло из переднего сегмента и небольшого каудального отростка. Поверхность тела была покрыта мелкими шипиками. Ротовая присоска размером 0,017×0,098 мм, за ней располагался хорошо развитый фаринкс- пищевод короткий, тонкие кишечные стволы достигали заднего конца тела. Брюшная присоска располагалась к переди от середины тела. Орган Бран-деса в форме эллипса имел продольную щель. Позади органа Брандеса видны зачатки гонад в виде скоплений клеток. Личинки, обнаруженные в легочной ткани, цисты не формировали.У собак на 20, 28, 30 и 35-е сут метацеркарий в легочной ткани не находили. Трематод обнаруживали в тонком кишечнике. У трематод (23 экз.), найденных в кишечнике на 28 и 30-е сут инвазии, была хорошо развита половая система, в матке имелись яйца. В фекалиях плотоядных впервые яйца алярий обнаружили на 35-е сутки инвазии, в дальнейшем интенсивность выделения яиц постепенно возрастала и на 60-е сутки болезни достигала своего максимального уровня.У инвазированных аляриями собак установлены изменения гематологических и биохимических показателей. На 4, 8 и 10-е сут у зараженных щенков отмечали беспокойство, кашель, температуру тела, равную 39,8 °С, снижение аппетита. В крови инва-зированных щенков концентрация гемоглобина (14,12±0,27−15,0±0,27 г%), эритроцитов (6,87±0,56−7,21±0,35 млн/мкл), общего белка (6,72±0,386,88±0,31 г%), альбуминов (3,67±0,183,84±0,18 г%), альфа-глобулиновРоссийский паразитологический журнал, 2008, № 2(0,91±0,09−0,97±0,07 г%), бета-глобулинов (0,94±0,06−1,01±0,05 г%) и гамма-глобулинов (0,93±0,041,10±0,05 г%) существенно не отличались от показателей контрольных, ин-тактных плотоядных. Однако у зараженных аляриями щенков число лейкоцитов было больше на 12,8−28,6% (у здоровых 9,16±0,38−9,22±0,44, у зараженных 12,64±0,56−14,12±0,81-5тыс. /мм). Кроме того, у инвазирован-ных щенков на 41−47,5% в сыворотке крови увеличена активность АлАТ (у контрольных 1,39±0,07−1,48±0,12, у зараженных 1,96±0,12−2,18±0,16 ед. /ммоль), на 35,6−37,5% - АсАТ (соответственно 1,39±0,07−1,44±0,08 и 1,88±0,06−1,98±0,07 ед. /ммоль), на 13,9−22,8% - щелочной фосфатазы (соответственно 3,58±0,09−3,68±0,18 и 4,08±0,21−4,52±0,36 ед. /л), на 26,1-28,7% - альфа-амилазы (соответственно 3,22±0,08−3,48±0,18 и 4,06±0,22−4,48±0,19 ед. /л). В дальнейшем, на 15−20-е сут инвазии (острая стадия, когда личинки алярий паразитируют в альвеолярной ткани легких, завершается формирование мета-церкариев и начинается их миграция из легких в трахею, затем через ротовую полость в кишечник) выражены признаки поражения органов дыхания: температура тела составила 40,2 °С, пульс 150−160 ударов в мин, дыхание 25−28 в мин. Отмечают кашель, хрипы, выделения серозного характера из ноздрей. В крови зараженных плотоядных уменьшается концентрация гемоглобина на 9,8±0,18%, эритроцитов— 7,4±0,12, общего белка — 8,8±0,23, альбуминов — 12,4±0,26%, увеличивается глобулиновые фракции белка на 26,8±0,12%, на 38,4±0,96% - число лейкоцитов по сравнению с показате-3лями контрольных, не зараженных гельминтами плотоядных. Кроме того, в сыворотке крови инвазированных собак активность АлАТ была в среднем на 55,6%, АсАТ — 48,6, щелочной фосфатазы — 28,4, альфа-амилазы -31,4% выше показателей интактных животных.На 35, 45, 60 и 90-е сут инвазии (половозрелые трематоды паразитируют на слизистой оболочке кишечника, развивается хронический язвенный энтерит) в поведении больных собак не регистрировали существенных отклонений от нормы. Однако в крови содержалось меньше гемоглобина (на 11,2±0,18−12,6±0,12%),эритроцитов (на 8,9±0,14%), общего белка (на 10,4±0,18%), альбуминов (на 14,8±0,17%), но на 30,4±0,18% обнаружено больше альбуминовых фракций белка, на 24,4±0,86% - лейкоцитов, 58,4% - АлАТ, 44,4% -АсАТ, 24,4% - щелочной фосфатазы,24,8% - альфа-амилазы.После дегельминтизации фенбен-дазолом (100%-ная эффективность лечения) гематологические и биохимические показатели у переболевших аляриозом плотоядных постепенно улучшались и на 60-е сут существенно не отличались от таковых контрольных, интактных животных.Таким образом, в Европейской части России аляриоз регистрируют у бродячих, фермских и квартирных собак, волков и лис. Остальные виды диких плотоядных свободны от этих трематод. Развитие A. alata происходит при участии промежуточного (моллюсков P. planorbis, в организме которых формируются церкарии), ре-зервуарного (головастики и взрослые амфибии, в организме которых формируются мезоцеркарии), дополнительного и дефинитивного хозяина (плотоядные, метацеркарии у них паразитируют в легких, а половозрелые трематоды — на слизистой оболочке тонкого кишечника).Заболевание протекает в острой и хронической формах. При аляриозе у плотоядных в крови снижается концентрация общего белка и альбуминов, увеличиваются глобулиновые фракции белка, активность ферментов АлАТ, АсАТ, щелочной фосфатазы, альфа-амилазы, возникает лейкоцитоз, что свидетельствует о нарушении функций органов и систем под действием антигенов трематод.Эффективным средством для лечения плотоядных при аляриозе является фенбендазол в дозе 40 мг/кг по ДВ 3 дня подряд.Литература1. Абалихин Б. Г., Крючкова Е. Н., Сорокина О. Ю. // Матер. науч. -практ. конф. — Иваново, 2004. — Т. 2. — С. 19−20.2. Абалихин Б. Г., Крючкова Е. Н., Сорокина О. Ю. // Матер. междунар. науч. -практ. конф. — Кострома, 2004. — Т. 2. — С. 57.3. Буслаев С. В., Антонов М. К., Абалихин Б. Г., Егоров С. В. // Матер. междунар. науч. -практ. конф. — Киров, 2002. — С. 546−547.4. Крючкова Е. Н., Сорокина О. Ю. Абалихин Б.Г., Буслаев С. В. // Матер. междунар. науч. конф. — Иваново, 2005. — Т. 2. — С. 35−36.5. Петров Ю. Ф. и др. Рекомендации по профилактике аляриоза плотоядных. — М., 2004. — 10 с.6. ПотехинаЛ.Ф. // Сб. тр. АН СССР. — М., 1971. — № 2. — С. 325−327.7. Савинов В. А. // Тр. Всес. ин-та гельминтол. — 1953. — № 5. — С. 63−64.8. Шинкаренко А. Н. Экология паразитов собак и меры борьбы с вызываемыми ими заболеваниями в Нижнем Поволжье: Автореф. дис. … докт. вет. наук.— Иваново, 2005. — 54 с.9. Ястреб В. Б., Абалихин Б. Г., Крючкова Е. Н. // Матер. науч. конф. Все-рос. о-ва гельминтол. «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями».— М., 2003. — Вып. 4. — С. 512−514.Biology of Alaria alata and epizootology of alariosis in European part of RussiaJu.F. Petrov, A.V. Zubov, A.V. Trusova, E.V. Korenskova,H.H. ShahbievAlariosis is registered at dogs, wolves and foxes in European part of Russia. Development of Alaria alata in definitive, intermediate and additional hosts is investigated. The disturbances of functions of organs and systems of animals are showed at alariosis. Fenbendazole in a doze of 3×40 mg/kg of body weight has shown 100 efficacy against A. alata.
Показать Свернутьsinp.com.ua
