А.В. Шурлыгина, С.В. Мичурина, Л.В. Вербицкая, Е.В. Мельникова, М.В. Битхаева, В.А. Труфакин. ГУ НИИ Клинической и экспериментальной лимфологии СО РАМН, ЦНИЛ Новосибирской Государственной медицинской академии МЗ РФ, г. Новосибирск.
Содержание мышей (CBA X C57BL)F1 в условиях круглосуточного освещения в течении двух недель приводило к развитию внутреннего десинхроноза (ДС), при котором реакции иммунной системы на воздействие бенз(а)пирена (БП) достоверно отличались от реакций интактных животных. Предполагается, что различия связаны с изменением циркадианных ритмов иммунных показателей у опытных животных, так как действие БП в контроле и при ДС приходится на различное соотношение и, возможно, функциональное состояние иммунокомпетентных клеток.
Ключевые слова: десинхроноз, бенз(а)пирен, иммунный ответ, лимфоидные органы.
Иммунная система является одним из важнейших адаптационных механизмов. Экзогенные или эндогенные факторы всегда вызывают изменения в клеточных или гуморальных звеньях иммунитета [3]. В то же время иммунная система подчиняется принципу ритмичности протекания всех биопроцессов [1, 7]. Можно предположить, что при рассогласовании по фазе циркадианных ритмов различных функций организма – десинхронозе (ДС) может измениться степень или направленность воздействия факторов. Однако влияние десинхронизации биоритмов на чувствительность/резистентность иммунной системы мало изучено. В настоящее время один из основных трендов экологического неблагополучия – это химические загрязнения, обусловливающие повышение заболеваемости на техногенно нагруженных территориях [2, 3, 5, 6], из которых по критериям ВОЗ наиболее опасным и распространенным является бенз(a)пирен (БП) [5]. БП - иммунодепрессант, влияет на процессы дифференцировки предшественников Т клеток, приводит к снижению их реакции на ИЛ-2 [5, 8]. В настоящем исследовании изучали особенности влияния БП на параметры иммунной системы мышей при индукции экспериментального десинхроноза.
МЕТОДИКА ИССЛЕДОВАНИЯ
Экспериментальная модель ДС: мыши (CBAxC57BL)F1 находились две недели при круглосуточном освещении [1]. Контрольные группы содержались при обычном световом режиме. На 15-й день мышей декапитировали в 10.00, 15.00 и в 19.00 часов по 5-6 животных из каждой группы в каждую временную точку для определения суточных вариаций исследуемых показателей. Оставшимся мышам обеих групп, по 6 животных в каждой группе, вводили внутрибрюшинно БП в 10.00 ч в течении 3 дней в суммарной дозе 60 мг/кг в минимальном объеме оливкового масла (0.2мл). Активным контролем служило введение минимального объема оливкового масла. Этих животных декапитировали в 10.00 ч на следующий день после 3-ей инъекции БП и оливкового масла. В крови определяли лейкоцитоз и лейкоцитарную формулу.
В лимфоидных органах определяли количество клеток, % и общее количество лимфоцитов и бластов, весовые органные индексы. Содержание различных субпопуляций лимфоцитов в тимусе и в селезенке исследовали в 10.00 ч методом проточной цитометрии с моноклональными антителами против лимфоцитарных антигенов CD3, CD4, CD8 и CD25, меченных FITC и PE (Pharmingen) на проточном цитометре FACSCalibur (Becton Dickinson). Гуморальный иммунный ответ на Т-зависимый антиген – эритроциты барана (ЭБ) - определяли по количеству антителообразующих клеток (АОК) в селезенке на 4-е сутки после внутрибрюшинного введения антигена по методу Cunningham [4]. Статистическую обработку проводили с использованием пакета статистических программ “Statistica 5”. Достоверность различий оценивали по непараметрическому критериям Манна-Уитни и с использованием дисперсионного многомерного анализа MANOVA при 95% уровне значимости.
РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
У мышей под влиянием постоянного освещения по сравнению с интактными выявлены достоверные отличия по следующим показателям. В крови повышался % лимфоцитов и снижался % полиморфноядерных лейкоцитов (ПЯЛ) в 10.00 ч. В тимусе повышался % лимфоцитов в 10.00 ч и 14.00 ч и снижался % бластов в 14.00 ч. В селезенке наблюдалось увеличение веса и весового индекса в 10.00 ч, 15.00 ч, 19.00 ч, общего количества спленоцитов а также лимфоцитов в 10.00 ч, 15.00 ч и бластов в 10.00 ч, 15.00 ч, 19.00 ч; в то же время % лимфоцитов снижался в 10.00 ч и в 19.00 ч, а % бластов повышался в 10.00 ч. Изменялся и характер суточных вариаций исследованных показателей (рис. 1).
Рис. 1. Влияние постоянного освещения на суточные вариации показателей иммунной системы у мышей (CBA X C57Bl)F1.
Одинаковыми значками обозначены показатели, достоверно отличающиеся друг от друга при р<0,05.
Постоянное освещение повлияло и на субпопуляционный состав клеток лимфоидных органов. В тимусе снизился % зрелых Т-клеток CD3+25- (57.8±1.3 и 62.2±0.7 p<0.05), претимоцитов CD3-25+ (0.34±0.07 и 0.64±0.09 p<0.05) и клеток с рецептором к ИЛ-2 CD25+(1.7±0.2 и 2.4±0.2 p<0.05), что можно расценивать как супрессию процессов дифференцировки и активации. В селезенке, повысился % Т-хелперов CD4+ (30.5±0.8 и 22.4±1.15 p<0.01) и отношение CD4+/CD8+ (1.79±0.09 и 1.39±0.11 p=0.02). Можно предположить, что эта динамика отражает компенсаторные реакции периферических лимфоидных органов в ответ на угнетение функций центрального звена иммунитета.
Таким образом, изменения параметров иммунной системы у подопытных животных, могут свидетелствовать о развитии внутреннего десинхроноза и изменении структурно-функциональных параметров центральных и периферических органов иммунной системы при нарушении светового режима.
Влияние БП на интактных животных и при десинхронозе оказалось неоднозначно (данные представлены в табл. 1 и 2). В крови контрольных мышей БП не изменял процентное соотношение форменных элементов, а на фоне ДС снижал % лимфоцитов и повышал % ПЯЛ. В тимусе мышей контрольной группы БП снижал % Т-хелперов (CD4+), повышал % зрелых Т-клеток (CD3+25-) при снижении % претимоцитов (CD3-25+), что можно расценить как нарушение центральной дифференцировки Т-клеток с угнетением созревания Т-хелперов. При десинхронозе БП повышал % зрелых Т-клеток (CD3+25-) в большей степени, чем в контроле и не влиял на % претимоцитов (CD3-25+). Повышение % CD25+ тимоцитов, и соотношения CD4+/CD8+ можно расценить как направление дифференцировки в сторону созревания Т-хелперов, что может быть проявлением компенсаторной реакции.
В селезенке у животных контрольной группы БП не влиял на процент субпопуляций CD4+ и CD8+ и снижал вес органа. Кроме того, наблюдалась тенденция к снижению процента лимфоцитов. При десинхронозе БП снижал % Т-хелперов, общее количество спленоцитов, лимфоцитов и бластов. В брыжеечных лимфоузлах в контрольной группе БП снижал % бластов, а на фоне ДС наблюдалась только тенденция к их снижению. (Таблицы 1, 2).
Таблица 1 Влияние БП на показатели иммунной системы интактных мышей.
Показатели |
Группы животных |
||
Интактный контроль |
Введение оливкового масла |
Введение БП |
|
M ± m |
M ± m |
M ± m |
|
Вес тимуса, мг |
33.0 ±2.22 |
31.6±3.63 |
25.67 ±2.09* |
Бласты в тимусе,% |
26.9±0.84 |
19.5±6.81 |
16.7±3.13* |
CD3-25+ в тимусе, % |
0.64±0.09 |
1.04±0.07* |
0.53±0.13# |
CD3+25- в тимусе, % |
62.2±0.7 |
63.7±7.7 |
76.1±5.2* |
CD3+ в тимусе, % |
63.9±0.64 |
66.02±3.8 |
78.45. ±5.4* |
CD3+ hi в тимусе, % |
13.7±1.7 |
22.7±6.9 |
39.4±3.6* |
CD4+ в тимусе, % |
93.2±0.1 |
89.9±1.3 |
86.3±1.1*# |
CD8+ в тимусе, % |
87.9±1.46 |
76.12±4.06* |
65.9±2.07* |
CD4+/ CD8+ в тимусе |
1.06 ±0.02 |
1.19±0.06* |
1.31±0.03* |
Вес селезенки, мг |
84.5±3.62 |
84.4±4.37 |
73.17±2.72*# |
Лимфоциты в селезенке, % |
73.5±1.47 |
64.62±3.12* |
61.8±7.13 |
Бласты в лимфоузлах,% |
29.9±3.17 |
14.06±3.13* |
16.23±2.35* |
Примечание: * - достоверные отличия от интактного контроля, # -достоверные отличия от “активного контроля” (введение оливкового масла) при p<0,05.
Таблица 2 Влияние БП на показатели иммунной системы мышей в состоянии десинхроноза.
Показатели |
Группы животных |
||
Постоянный свет |
Постоянный свет и оливковое масло |
Постоянный свет и БП |
|
M ± m |
M ± m |
M ± m |
|
Лимфоциты в крови,% |
84.0±1.12 |
80.17±3.2 |
73.0±3.5* |
ПЯЛ в крови, % |
8.7±0.7 |
15.0±2.56* |
22.5±2.9* |
Лимфоциты в тимусе, % |
72.5±2.7 |
56.1±2.5* |
66.7±3.8# |
CD3-25+ в тимусе, % |
0.34±0.07 |
0.35±0.06 |
0.58±0.18 |
CD3+25- в тимусе, % |
57.8±1.3 |
56.3±3.6 |
73.3±5.1*# |
CD3+25+ в тимусе, % |
1.4±0.2 |
1.05±0.2 |
2.48±0.5*# |
CD25+ в тимусе, % |
1.7±0.2 |
1.4±0.2 |
3.05±0.4*# |
CD3+ в тимусе, % |
61.2±1.9 |
57.3±3.8 |
75.8±5.45#* |
CD3+hi в тимусе, % |
13.2±0.5 |
15.6±0.34* |
58.05±8.2*# |
CD8+ в тимусе, % |
86.2±0.6 |
85.0±0.6 |
48.3±7.02*# |
CD4 +/ CD8+ в тимусе |
1.08±0.01 |
1.07±0.04 |
1.84±0.26*# |
Количество спленоцитов ´ 106 |
861.5±88.9 |
840.0±114.6 |
248.03±52.2*# |
Лимфоциты в селезенке ´ 106 |
583.0±60.0 |
565.4±85.2 |
159.4±33.0*# |
Бласты в селезенке ´ 106 |
239.6±29.4 |
138.4±45.5 |
45.5±13.2*# |
CD4+ в селезенке, % |
30.5±0.8 |
31.7±1.7* |
28.1±0.5# |
Бласты в лимфоузлах,% |
30.9±1.97 |
16.7±2.3* |
25.1±4.3 |
Примечание: * - достоверные отличия от интактного контроля, # -достоверные отличия от “активного контроля” (введение оливкового масла) при p<0,05.
БП подавлял гуморальный иммунный ответ на ЭБ у интактных мышей и не оказывал достоверного влияния на этот показатель при десинхронозе, хотя тенденция к снижению сохранялась (Рис.2).
Рис.2. Количество антителообразующих клеток в селезенке на 4-е сутки после иммунизации ЭБ у мышей (CBA X C57Bl)F1 при нормальном световом режиме и при постоянном освещении.
* - показатели достоверно отличаются друг от друга при р<0,05.
Можно предположить, что неодинаковое влияние БП на иммунную систему мышей интактных и в состоянии десинхроноза связано с различиями циркадианных ритмов иммунных показателей у этих групп животных. В результате этого действие БП в контроле и при десинхронозе, вероятно, приходится на различное соотношение и функциональное состояние иммунокомпетентных клеток.
armeda.ru
Технологическая карта для самостоятельного изучения теоретического материала
Способность организма отвечать на естественные циклические экологические явления колебаниями параметров реактивности называется биологическими ритмами. Насчитывают около 300 ритмически колеблющихся параметров реактивности. Наиболее хорошо изучены циркадные (околосуточные) ритмы с периодом 20-28 часов. Важную роль в динамике реактивности организма играют околомесячные ритмы. В частности, лунно-месячному ритму следует менструальный цикл женщин. В естественной среде организм подвержен влиянию сложного динамического комплекса ритмических факторов. Нарушение естественного хода биологических ритмов, их взаимной согласованности, т.е. десинхроноз, является обязательным компонентом общего адаптационного синдрома, поэтому очевидна связь проблемы биологических ритмов с проблемой адаптации. Понимание закономерностей ритмичности адаптационного процесса имеет большое практическое значение, поскольку позволяет прогнозировать динамику состояния организма при остром и хроническом стрессе, вызванном как внутренними, так и внешними причинами. Например, прогнозирование течения хронических заболеваний, ход процессов восстановления после острых заболеваний, смену процессов периодов улучшения и ухудшения состояния в процессе приспособления к экстремальным условиям существования (длительный космический полет). Знания о закономерностях ритмичности адаптационного процесса позволяют принимать своевременные меры, направленные на поддержание благополучия организма человека. Изучением закономерностей биоритмов и их значения для здоровья человека занимается хрономедицина. Хрономедицина включает в себя хронофизиологию, хронопатологию и хронотерапиию. Хрономедицина ставить целью использование закономерностей биоритмов для улучшения профилактики, диагностики и лечения заболеваний человека. Для использования законов биоритмов необходимо ввести понятие хронобиологической нормы. Хронобиологическая норма включает в себя индивидуальный хронотип, хроноадаптацию, хронореактивность. Отклонение от этих норм называют хронопатологиией. Если учесть, что любое патологическое состояние или болезнь сопровождается нарушением течения физиологических функций, то можно выделить целое направление - хронопатологию. Хронотерапия имеет большой фактический материал о зависимости действия лекарственных веществ на организм человека от фазы биоритма.
7. Ученые, работавшие (работающие) в данном направлении, их заслуги. А.А. Богомолец считал, что ритм жизненных процессов в организме определен его конституцией. А.Л. Чижевский установил, что в основе цир-кадных (околосуточных) и сезонных ритмов лежит чувствительность организма к фотопериодическим явлениям. А.С. Пересман (1971), Б.В. Алешин (1974), Дж. Рейтер (!990) выявили, что главным фото-пейсмейкером в нейроэндокринной системе выступает эпифиз. Н.А. Агаджаиян, И.В. Радыш, СИ. Краюшкин (1996) - современная разработка вопросов по изучению механизмов хронопатологии. Комаров Ф.И., Рапопорт СИ. (2000) -разработка вопросов хронопатологии и хрономедицины. Заславская P.M. (I991) - вопросы хронодигностики и хронотерапии сердечно-сосудистой системы.
8. Вопросы, подлежащие проверке при промежуточной и экзаменационной аттестации.
Агаджанян Н.А., Радыш И.В., Краюшкин СИ. Хроноструктура репродуктивной функции. - М.: Круг, 1996.-243с.
АсланянН.Л., Чибисов СМ., Халаби Г. Методические рекомендации к изучению курса «Патологиче ская физиология», тема «Патофизология биоритмов». М.: РУДН.- 1989. ~46с.
Баркова Э.Н., Жданова Е.В., Курлович Н.А. Хронофизиология и хронопатология обмена железа // ОАО «Полиграфист». - 2001. - Екатеринбург.-293с.
Бедненко B.C., Ступаков Г.П. Изменение состояния внутренних органов в длительных космических полетах // Первый Российский конгресс по патофизиологии. Москва, 17-19 октября 1996. - М.: РГМУ, 1996.-С. 326-327.
Биленко НЛ.//Клин. мед.-2003. -№б.-Т81. С 19-23.
Бреус Т.К., Чибисов СМ., Баевский P.M., Шебзухов К.В. Хроностуктура биоритмов сердца и факторов внешней среды // «Полиграф сервис», Москва. - 2002. - 230с.
Бродский В.Я. Околочасовые биологичесские ритмы. Распространение, природа, значение, связи с циркадианной ритмикой // Хронопатология и хрономедицина (под. ред. Комарова Ф.И. и Рапопорта СИ.)-С. 91-101.
Верещагин Н.В., Пирадов М.А. // Неврологич. журнал. - 1999. -№5. -С4-6.
Владимирский Б.М., Кисловский А.Д. Солнечная активность и биосфера. - М., 1982.
Гехт К., Вахтель Е, Взаимоотношения циркадианных и минутных ритмов у крыс линии Вистар после космического полета на биоспутнике «Космос-1129» // Проблемы космической биологии. - М.: Наука. 1989.-Т. 64.-С. 124-140.
Горбунов В.М. Значение 24-часового мониторирования в выявлении и лечении артериальной гиперто нии//Кардиология. - 1995.-Т. 35. -№6.-С.64-70.
Долгов В.В., Луговская С.А., Почтарь М.Е, Лабораторная диагностика нарушений обмена железа // Vi tal Diagnostics, Санкт-Петербург. - 2002. - 51 с.
Дряпа Н.Р., Мошкин М.П., Поеный B.C. // Проблемы медицинской биоритмологии. - М.: Медицина, 1989.-207с.
Зайчик А.Ш., Чурилов Л.П. Обшая патофизиология. Учебник для медицинских ВУЗов, второе издание. - ЭЛБИ-СЛБ. - 2001. С. 80-82.
Заславская P.M. Хронодиагностика и хронотерапия заболеваний сердечно-сосудистой системы. - 1991.-319с.
Комаров Ф.И. и соавт. Медико-биологические эффекты солнечной активности // Вестниик академии мед. наук. - М., 1994. - №9. -Вып. 11.-С. 37-50.
Комаров Ф.И., Загускин С.Л. Рапопорт СИ. Хронобиологическое направление в медицине // Тер. ар хив., 1994-№8.-С 3-9.
Комаров Ф.И., Рапопорт СИ. Хронопатология и хрономедицина. - М.: ТриадаХ, 2000. - 488с.
Романов Е.А., Еременко Л.Л., Левина А. А., Зарецкая Ю.М. // Проблемы гематологи и,№2. - 1999. - С 34-38.
ПейдтТ.Л. Биологические ритмы (под ред. 10. Атофда). - М.: Мир, 1984. -Т. 1.- С. 152-187.
Рапопорт СИ., Большакова Т.Д., Ораевский В.Н., Бреус Т.К. Магнитная буря как стресс // биофизика. - 1998. - Т. 43. - Вып 4. - С. 632- 639.
Селье Г. Стресс без дистресса. - М.: Пргресс, 1979. - 129 с.
Степанова СИ. Стресс и биологические ритмы // Космич.биология. - 1982. -№1. -С. 16-20.
Чибисов СМ., Овчинникова Л.К., Бреус. Т.К. Биологические ритмы сердца и «внешний стресс».- М., 1998,250 с.
Чижевский А.Л. Космический пульс жизни: Земля в объятиях Солнца. Гелиотараксия. - М: Мысль, 1995.- 756с.
Яковлев В.А. Суточный ритм гемодинамики у больных гипертонической болезнью // Военно-мед. жур нал. - 1978, №6.-С 75-78.
10. Вопросы для самоконтроля.
Зав.кафедрой Рогова Л.Н.
studfiles.net
А.В. Шурлыгина, С.В. Мичурина, Л.В. Вербицкая, Е.В. Мельникова, М.В. Битхаева, В.А. Труфакин. ГУ НИИ Клинической и экспериментальной лимфологии СО РАМН, ЦНИЛ Новосибирской Государственной медицинской академии МЗ РФ, г. Новосибирск.
Содержание мышей (CBA X C57BL)F1 в условиях круглосуточного освещения в течении двух недель приводило к развитию внутреннего десинхроноза (ДС), при котором реакции иммунной системы на воздействие бенз(а)пирена (БП) достоверно отличались от реакций интактных животных. Предполагается, что различия связаны с изменением циркадианных ритмов иммунных показателей у опытных животных, так как действие БП в контроле и при ДС приходится на различное соотношение и, возможно, функциональное состояние иммунокомпетентных клеток.
Ключевые слова: десинхроноз, бенз(а)пирен, иммунный ответ, лимфоидные органы.
Иммунная система является одним из важнейших адаптационных механизмов. Экзогенные или эндогенные факторы всегда вызывают изменения в клеточных или гуморальных звеньях иммунитета [3]. В то же время иммунная система подчиняется принципу ритмичности протекания всех биопроцессов [1, 7]. Можно предположить, что при рассогласовании по фазе циркадианных ритмов различных функций организма – десинхронозе (ДС) может измениться степень или направленность воздействия факторов. Однако влияние десинхронизации биоритмов на чувствительность/резистентность иммунной системы мало изучено. В настоящее время один из основных трендов экологического неблагополучия – это химические загрязнения, обусловливающие повышение заболеваемости на техногенно нагруженных территориях [2, 3, 5, 6], из которых по критериям ВОЗ наиболее опасным и распространенным является бенз(a)пирен (БП) [5]. БП - иммунодепрессант, влияет на процессы дифференцировки предшественников Т клеток, приводит к снижению их реакции на ИЛ-2 [5, 8]. В настоящем исследовании изучали особенности влияния БП на параметры иммунной системы мышей при индукции экспериментального десинхроноза.
МЕТОДИКА ИССЛЕДОВАНИЯ
Экспериментальная модель ДС: мыши (CBAxC57BL)F1 находились две недели при круглосуточном освещении [1]. Контрольные группы содержались при обычном световом режиме. На 15-й день мышей декапитировали в 10.00, 15.00 и в 19.00 часов по 5-6 животных из каждой группы в каждую временную точку для определения суточных вариаций исследуемых показателей. Оставшимся мышам обеих групп, по 6 животных в каждой группе, вводили внутрибрюшинно БП в 10.00 ч в течении 3 дней в суммарной дозе 60 мг/кг в минимальном объеме оливкового масла (0.2мл). Активным контролем служило введение минимального объема оливкового масла. Этих животных декапитировали в 10.00 ч на следующий день после 3-ей инъекции БП и оливкового масла. В крови определяли лейкоцитоз и лейкоцитарную формулу.
В лимфоидных органах определяли количество клеток, % и общее количество лимфоцитов и бластов, весовые органные индексы. Содержание различных субпопуляций лимфоцитов в тимусе и в селезенке исследовали в 10.00 ч методом проточной цитометрии с моноклональными антителами против лимфоцитарных антигенов CD3, CD4, CD8 и CD25, меченных FITC и PE (Pharmingen) на проточном цитометре FACSCalibur (Becton Dickinson). Гуморальный иммунный ответ на Т-зависимый антиген – эритроциты барана (ЭБ) - определяли по количеству антителообразующих клеток (АОК) в селезенке на 4-е сутки после внутрибрюшинного введения антигена по методу Cunningham [4]. Статистическую обработку проводили с использованием пакета статистических программ “Statistica 5”. Достоверность различий оценивали по непараметрическому критериям Манна-Уитни и с использованием дисперсионного многомерного анализа MANOVA при 95% уровне значимости.
РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
У мышей под влиянием постоянного освещения по сравнению с интактными выявлены достоверные отличия по следующим показателям. В крови повышался % лимфоцитов и снижался % полиморфноядерных лейкоцитов (ПЯЛ) в 10.00 ч. В тимусе повышался % лимфоцитов в 10.00 ч и 14.00 ч и снижался % бластов в 14.00 ч. В селезенке наблюдалось увеличение веса и весового индекса в 10.00 ч, 15.00 ч, 19.00 ч, общего количества спленоцитов а также лимфоцитов в 10.00 ч, 15.00 ч и бластов в 10.00 ч, 15.00 ч, 19.00 ч; в то же время % лимфоцитов снижался в 10.00 ч и в 19.00 ч, а % бластов повышался в 10.00 ч. Изменялся и характер суточных вариаций исследованных показателей (рис. 1).
Рис. 1. Влияние постоянного освещения на суточные вариации показателей иммунной системы у мышей (CBA X C57Bl)F1.
Одинаковыми значками обозначены показатели, достоверно отличающиеся друг от друга при рПостоянное освещение повлияло и на субпопуляционный состав клеток лимфоидных органов. В тимусе снизился % зрелых Т-клеток CD3+25- (57.8±1.3 и 62.2±0.7 pТаким образом, изменения параметров иммунной системы у подопытных животных, могут свидетелствовать о развитии внутреннего десинхроноза и изменении структурно-функциональных параметров центральных и периферических органов иммунной системы при нарушении светового режима.
Влияние БП на интактных животных и при десинхронозе оказалось неоднозначно (данные представлены в табл. 1 и 2). В крови контрольных мышей БП не изменял процентное соотношение форменных элементов, а на фоне ДС снижал % лимфоцитов и повышал % ПЯЛ. В тимусе мышей контрольной группы БП снижал % Т-хелперов (CD4+), повышал % зрелых Т-клеток (CD3+25-) при снижении % претимоцитов (CD3-25+), что можно расценить как нарушение центральной дифференцировки Т-клеток с угнетением созревания Т-хелперов. При десинхронозе БП повышал % зрелых Т-клеток (CD3+25-) в большей степени, чем в контроле и не влиял на % претимоцитов (CD3-25+). Повышение % CD25+ тимоцитов, и соотношения CD4+/CD8+ можно расценить как направление дифференцировки в сторону созревания Т-хелперов, что может быть проявлением компенсаторной реакции.
В селезенке у животных контрольной группы БП не влиял на процент субпопуляций CD4+ и CD8+ и снижал вес органа. Кроме того, наблюдалась тенденция к снижению процента лимфоцитов. При десинхронозе БП снижал % Т-хелперов, общее количество спленоцитов, лимфоцитов и бластов. В брыжеечных лимфоузлах в контрольной группе БП снижал % бластов, а на фоне ДС наблюдалась только тенденция к их снижению. (Таблицы 1, 2).
Таблица 1 Влияние БП на показатели иммунной системы интактных мышей.
Показатели | Группы животных | ||
Интактный контроль | Введение оливкового масла | Введение БП | |
M ± m | M ± m | M ± m | |
Вес тимуса, мг | 33.0 ±2.22 | 31.6±3.63 | 25.67 ±2.09* |
Бласты в тимусе,% | 26.9±0.84 | 19.5±6.81 | 16.7±3.13* |
CD3-25+ в тимусе, % | 0.64±0.09 | 1.04±0.07* | 0.53±0.13# |
CD3+25- в тимусе, % | 62.2±0.7 | 63.7±7.7 | 76.1±5.2* |
CD3+ в тимусе, % | 63.9±0.64 | 66.02±3.8 | 78.45. ±5.4* |
CD3+hi в тимусе, % | 13.7±1.7 | 22.7±6.9 | 39.4±3.6* |
CD4+ в тимусе, % | 93.2±0.1 | 89.9±1.3 | 86.3±1.1*# |
CD8+ в тимусе, % | 87.9±1.46 | 76.12±4.06* | 65.9±2.07* |
CD4+/ CD8+ в тимусе | 1.06 ±0.02 | 1.19±0.06* | 1.31±0.03* |
Вес селезенки, мг | 84.5±3.62 | 84.4±4.37 | 73.17±2.72*# |
Лимфоциты в селезенке, % | 73.5±1.47 | 64.62±3.12* | 61.8±7.13 |
Бласты в лимфоузлах,% | 29.9±3.17 | 14.06±3.13* | 16.23±2.35* |
Примечание: * - достоверные отличия от интактного контроля, # -достоверные отличия от “активного контроля” (введение оливкового масла) при pТаблица 2 Влияние БП на показатели иммунной системы мышей в состоянии десинхроноза.
Показатели | Группы животных | ||
Постоянный свет | Постоянный свет и оливковое масло | Постоянный свет и БП | |
M ± m | M ± m | M ± m | |
Лимфоциты в крови,% | 84.0±1.12 | 80.17±3.2 | 73.0±3.5* |
ПЯЛ в крови, % | 8.7±0.7 | 15.0±2.56* | 22.5±2.9* |
Лимфоциты в тимусе, % | 72.5±2.7 | 56.1±2.5* | 66.7±3.8# |
CD3-25+ в тимусе, % | 0.34±0.07 | 0.35±0.06 | 0.58±0.18 |
CD3+25- в тимусе, % | 57.8±1.3 | 56.3±3.6 | 73.3±5.1*# |
CD3+25+ в тимусе, % | 1.4±0.2 | 1.05±0.2 | 2.48±0.5*# |
CD25+ в тимусе, % | 1.7±0.2 | 1.4±0.2 | 3.05±0.4*# |
CD3+ в тимусе, % | 61.2±1.9 | 57.3±3.8 | 75.8±5.45#* |
CD3+hi в тимусе, % | 13.2±0.5 | 15.6±0.34* | 58.05±8.2*# |
CD8+ в тимусе, % | 86.2±0.6 | 85.0±0.6 | 48.3±7.02*# |
CD4 +/ CD8+ в тимусе | 1.08±0.01 | 1.07±0.04 | 1.84±0.26*# |
Количество спленоцитов ´ 106 | 861.5±88.9 | 840.0±114.6 | 248.03±52.2*# |
Лимфоциты в селезенке ´ 106 | 583.0±60.0 | 565.4±85.2 | 159.4±33.0*# |
Бласты в селезенке ´ 106 | 239.6±29.4 | 138.4±45.5 | 45.5±13.2*# |
CD4+ в селезенке, % | 30.5±0.8 | 31.7±1.7* | 28.1±0.5# |
Бласты в лимфоузлах,% | 30.9±1.97 | 16.7±2.3* | 25.1±4.3 |
Примечание: * - достоверные отличия от интактного контроля, # -достоверные отличия от “активного контроля” (введение оливкового масла) при pБП подавлял гуморальный иммунный ответ на ЭБ у интактных мышей и не оказывал достоверного влияния на этот показатель при десинхронозе, хотя тенденция к снижению сохранялась (Рис.2).
Рис.2. Количество антителообразующих клеток в селезенке на 4-е сутки после иммунизации ЭБ у мышей (CBA X C57Bl)F1 при нормальном световом режиме и при постоянном освещении.
* - показатели достоверно отличаются друг от друга при рМожно предположить, что неодинаковое влияние БП на иммунную систему мышей интактных и в состоянии десинхроноза связано с различиями циркадианных ритмов иммунных показателей у этих групп животных. В результате этого действие БП в контроле и при десинхронозе, вероятно, приходится на различное соотношение и функциональное состояние иммунокомпетентных клеток.
ЛИТЕРАТУРА
1. Бородин Ю.И., Труфакин В.А., Летягин А.Ю., Шурлыгина А.В. Циркадные биоритмы иммунной системы. - Новосибирск, РИПЭЛ. - 1992. 2. Гичев Ю.П. Загрязнение окружающей среды и здоровье человека. М., Новосибирск. - 2002. 3. Дмитриев Д.А., Румянцева Е.Г. // Гиг. и сан. - 2002. - №3. - С.68-71. 4. Козлов В.А., Кудаева О.Т., Наумова Е.Н., Елисеева Т.В. Методическое руководство по применению метода локального гемолиза и статистическому оцениванию результатов. Методические рекомендации. – Новосибирск. - 1988. 5. Колесников С.И., Мичурина С.В., Семенюк А.В., Вакулин Г.М. Печень и ее регинарные лимфатические узлы при воздействии 3,4-бензпиреном. – Новосибирск. - 1995. 6. Коньшина Л.Г., Вараксин А.Н., Шершнев В Н. и др. // Гиг. и сан. - 2002. - №2. - С.52-54. 7. Труфакин В.А., Шурлыгина А.В., Дергачева Т.И. и др. // Вестн. РАМН. - 1999. - №4. - С. 40-43. 8. Rodriguez J.W., Kirlin W.G., Wirsiy Y.G. et al. // Immunopharmacol. Immunotoxikol. -1999. - V.21. - №2. - P.379-396.
argo-tema.ru